| 摘要 | 第1-7页 |
| Abstract | 第7-14页 |
| 第一章 文献综述 | 第14-35页 |
| ·水稻白叶枯病研究进展 | 第14-18页 |
| ·水稻白叶枯病研究概况 | 第14页 |
| ·水稻白叶枯病抗病性研究进展 | 第14-18页 |
| ·水稻白叶枯病抗性基因的鉴定 | 第15-16页 |
| ·Xa21 介导的抗病机制 | 第16-17页 |
| ·水稻抗白叶枯基因的应用及前景展望 | 第17-18页 |
| ·植物基因功能研究方法 | 第18-25页 |
| ·基因功能研究策略 | 第18-19页 |
| ·表型驱动策略 | 第18-19页 |
| ·基因驱动策略 | 第19页 |
| ·植物基因功能研究的内容和技术手段 | 第19-25页 |
| ·差异表达基因的筛选 | 第19-20页 |
| ·生物信息学分析 | 第20页 |
| ·基因的时空表达分析 | 第20-22页 |
| ·通过转基因技术进行基因功能分析 | 第22-25页 |
| ·基因编码蛋白的功能研究 | 第25页 |
| ·BTF3 研究进展 | 第25-33页 |
| ·BTF3（βNAC）的发现 | 第25-26页 |
| ·酵母中BTF3（βNAC）同系物在转录调控中的潜在角色 | 第26-27页 |
| ·BTF3（βNAC）在高等真核生物体内的功能 | 第27页 |
| ·αNAC 作为转录共激活子的作用 | 第27-29页 |
| ·新生多肽关联复合体NAC | 第29-33页 |
| ·NAC 寡聚化结构和定位 | 第29-30页 |
| ·NAC 在蛋白正确转运至内质网中的作用 | 第30-32页 |
| ·NAC 促进蛋白转运至线粒体的作用 | 第32-33页 |
| ·NAC 在生物体内和功能的多样性和重要性 | 第33页 |
| ·本研究的目的意义和技术路线 | 第33-35页 |
| ·研究目的和意义 | 第33-34页 |
| ·技术路线 | 第34-35页 |
| 第二章 OSBTF3 的生物信息学分析和表达特性 | 第35-61页 |
| ·实验材料 | 第35-37页 |
| ·水稻材料和菌株 | 第35-36页 |
| ·生化试剂 | 第36页 |
| ·培养基和菌株培养条件 | 第36-37页 |
| ·实验方法 | 第37-44页 |
| ·OsBTF3 的生物信息学分析 | 第37页 |
| ·OsBTF3 的亚细胞定位 | 第37-40页 |
| ·转化大肠杆菌 | 第37-38页 |
| ·质粒的提取 | 第38页 |
| ·pCAM35S::OsBTF3-eGFP 重组表达载体的PCR 和酶切鉴定 | 第38-39页 |
| ·洋葱表皮的准备 | 第39页 |
| ·金粉的准备 | 第39-40页 |
| ·质粒包埋 | 第40页 |
| ·基因枪轰击 | 第40页 |
| ·Confocal 观察 | 第40页 |
| ·OsBTF3 时空表达特性分析 | 第40-44页 |
| ·水稻的栽培管理及组织样品采集 | 第40-41页 |
| ·水稻的幼苗的光诱导和伤处理 | 第41页 |
| ·水稻幼苗的化学诱导剂处理 | 第41页 |
| ·水稻幼苗的病原菌接种 | 第41页 |
| ·水稻幼苗的逆境胁迫处理 | 第41-42页 |
| ·水稻总RNA 的提取 | 第42-43页 |
| ·cDNA 合成 | 第43-44页 |
| ·Real-time PCR 分析 | 第44页 |
| ·结果与分析 | 第44-58页 |
| ·OsBTF3 的生物信息学分析 | 第44-51页 |
| ·OsBTF3 的基因结构和序列特征 | 第44-47页 |
| ·OsBTF3 与其它物种中BTF3 的序列比对 | 第47-51页 |
| ·OsBTF3 的亚细胞定位 | 第51-52页 |
| ·OsBTF3 的时空表达特性 | 第52-58页 |
| ·Real-time PCR 体系的建立 | 第52-54页 |
| ·OsBTF3 的组织表达特征 | 第54-55页 |
| ·OsBTF3 对信号分子诱导的应答反应 | 第55页 |
| ·OsBTF3 对伤诱导和病原菌接种的应答反应 | 第55-56页 |
| ·OsBTF3 在逆境胁迫下的表达动态 | 第56-58页 |
| ·讨论 | 第58-61页 |
| 第三章 OSBTF3 在水稻抗病性和抗逆性中的功能 | 第61-92页 |
| ·材料与方法 | 第61-69页 |
| ·农杆菌介导的水稻转化 | 第61-65页 |
| ·培养基的准备 | 第61-62页 |
| ·水稻转化程序 | 第62-64页 |
| ·T_0代OsBTF3 过量表达和RNAi 转基因植株的PCR 鉴定 | 第64-65页 |
| ·T1代OsBTF3 过量表达和RNAi 植株的筛选和PCR 鉴定 | 第65页 |
| ·T_1代转基因植株的潮霉素筛选 | 第65页 |
| ·T_1代转基因植株的PCR 鉴定 | 第65页 |
| ·T_1代转基因植株中OsBTF3 表达水平的检测 | 第65-66页 |
| ·水稻总RNA 的提取 | 第65页 |
| ·cDNA 的合成 | 第65-66页 |
| ·OSBTF3 在转基因植株中表达水平的Real-timePCR 检测 | 第66页 |
| ·T_1代转基因植株病害表型分析 | 第66-68页 |
| ·水稻白叶枯病菌Xoo 的接种鉴定 | 第66页 |
| ·水稻细菌性条斑病菌Xooc 的接种鉴定 | 第66-67页 |
| ·接种水稻白叶枯病菌后防卫相关基因表达的半定量PCR 分析 | 第67-68页 |
| ·T_2代转基因植株对逆境协迫的反应 | 第68-69页 |
| ·结果与分析 | 第69-89页 |
| ·T_0代OsBTF3 过量表达和RNAi 转基植株的获得 | 第69-73页 |
| ·农杆菌介导的水稻转化 | 第69-72页 |
| ·T0代转基因植株的PCR 鉴定 | 第72-73页 |
| ·T_1代OsBTF3 过量表达和RNAi 植株的筛选和PCR 鉴定 | 第73-75页 |
| ·T_1代转基因植株中OsBTF3 表达的检测 | 第75-77页 |
| ·T_1代转基因植株的病害表型鉴定 | 第77-87页 |
| ·T_1代转基因植株Xoo 接种的表型 | 第77-82页 |
| ·T_1代转基因植株Xooc 接种的表型 | 第82-83页 |
| ·T_1代转基因植株接种Xoo 后防卫相关基因的表达 | 第83-87页 |
| ·T_2代转基因植株对逆境胁迫的鉴定 | 第87-89页 |
| ·讨论 | 第89-92页 |
| 第四章 OSBTF3 对水稻生长发育的影响 | 第92-108页 |
| ·材料与方法 | 第92-94页 |
| ·OsBTF3 对水稻株高的影响 | 第92-93页 |
| ·T_1代转基因植株的株高调查 | 第92页 |
| ·T_1代转基因植株茎节数和节长 | 第92页 |
| ·T_1代转基因植株节细胞的扫描电镜观察 | 第92-93页 |
| ·OsBTF3 对水稻光合作用的影响 | 第93-94页 |
| ·T_1代转基因植株净光合速率的测定 | 第93页 |
| ·T_1代转基因植株叶绿素含量的测定 | 第93-94页 |
| ·T_1代转基因植株叶片气孔的扫描电镜观察 | 第94页 |
| ·T_1代转基因植株叶片超微组织结构的透射电镜观察 | 第94页 |
| ·OsBTF3 对水稻其它生物学性状的影响 | 第94页 |
| ·结果与分析 | 第94-105页 |
| ·OsBTF3 对水稻株高影响的原因分析 | 第94-98页 |
| ·T_1代OsBTF3 过量表达和RNAi 转基因株系的株高 | 第94-95页 |
| ·T_1代OsBTF3 过量表达和RNAi 转基因株系的茎节数和节长分析 | 第95-97页 |
| ·T_1代转基因株系的茎节细胞的扫描电镜观察 | 第97-98页 |
| ·OsBTF3 对水稻光合作用的影响 | 第98-102页 |
| ·T_1代转基因株系净光合速率和蒸腾速率的测定 | 第98-99页 |
| ·T_1代OsBTF3 过量表达和RNAi 转基因株系叶绿素含量 | 第99-100页 |
| ·T_1代OsBTF3 过量表达和RNAi 转基因株系叶片扫描电镜分析 | 第100-101页 |
| ·T_1代OsBTF3 过量表达和RNAi 转基因株系叶片超微组织结构观察 | 第101-102页 |
| ·OsBTF3 对水稻其它生物学性状的影响 | 第102-105页 |
| ·讨论 | 第105-108页 |
| 第五章 全文结论 | 第108-109页 |
| 参考文献 | 第109-124页 |
| 致谢 | 第124-126页 |
| 附录 | 第126-129页 |
| 作者简历 | 第129页 |
