| 摘要 | 第1-8页 |
| Abstract | 第8-11页 |
| 缩略表 | 第11-12页 |
| 1 前言 | 第12-21页 |
| ·胚乳细胞及淀粉质体的结构研究 | 第12-13页 |
| ·细胞程序性死亡特征及其检测方法 | 第13-16页 |
| ·细胞程序性死亡的一般特征 | 第13-14页 |
| ·胚乳细胞的PCD | 第14页 |
| ·PCD检测方法 | 第14-16页 |
| ·透射电子显微镜检测 | 第14-15页 |
| ·TUNEL检测 | 第15页 |
| ·DNA laddering检测 | 第15页 |
| ·Hoechst 33258/PI荧光复染色 | 第15-16页 |
| ·与植物PCD相关的信号 | 第16-17页 |
| ·禾谷类作物胚乳PCD相关基因研究进展 | 第17页 |
| ·淀粉合成过程中的相关酶类 | 第17-18页 |
| ·水分胁迫对植物发育的影响 | 第18-19页 |
| ·水分胁迫对植物生理的影响 | 第18-19页 |
| ·水分逆境对植物组织超微结构的影响 | 第19页 |
| ·植物激素和环境胁迫对籽粒灌浆和胚乳细胞PCD进程的影响 | 第19-20页 |
| ·本研究的目的及意义 | 第20-21页 |
| 2 材料与方法 | 第21-25页 |
| ·材料的种植及取样 | 第21页 |
| ·方法 | 第21-25页 |
| ·旗叶叶绿素含量的测定 | 第21页 |
| ·颖果发育的外部形态观察 | 第21-22页 |
| ·显微和超微结构观察 | 第22页 |
| ·DNA抽提和电泳 | 第22页 |
| ·总RNA的提取及RT-PCR | 第22-24页 |
| ·总RNA的提取 | 第22-23页 |
| ·总RNA的定量、完整性检测 | 第23页 |
| ·RT-PCR检测 | 第23-24页 |
| ·胚乳淀粉质体发育的结构观察 | 第24-25页 |
| ·LUGOL染色 | 第24页 |
| ·扫描电镜观察 | 第24-25页 |
| ·胚乳细胞PCD进程检测 | 第25页 |
| ·Evans Blue染色 | 第25页 |
| ·TUNEL标记 | 第25页 |
| 3 结果与分析 | 第25-36页 |
| ·胚乳细胞PCD发生的机理 | 第25-28页 |
| ·胚乳细胞的超微结构观察 | 第25-26页 |
| ·TUNEL检测 | 第26页 |
| ·DNA laddering检测 | 第26-27页 |
| ·胚乳细胞中总RNA的提取及AGPase的RT-PCR检测 | 第27-28页 |
| ·RNA浓度测定及质量鉴定 | 第27-28页 |
| ·AGPase基因的RT-PCR检测 | 第28页 |
| ·淹水胁迫对小麦淀粉质体和胚乳PCD进程的影响 | 第28-32页 |
| ·淹水条件下小麦旗叶的叶绿素含量的测定 | 第28-29页 |
| ·淹水对小麦颖果发育的外部形态影响 | 第29-30页 |
| ·淹水处理对胚乳淀粉质体发育的影响 | 第30-32页 |
| ·淹水对胚乳细胞PCD进程的影响 | 第32-36页 |
| ·Evans-Blue染色 | 第32-33页 |
| ·TUNEL原位检测DNA的断裂 | 第33页 |
| ·DNA laddering检测 | 第33-34页 |
| ·胚乳细胞PCD的超微结构特征 | 第34-36页 |
| 4 讨论 | 第36-42页 |
| ·胚乳细胞PCD与淀粉合成酶相关基因的表达 | 第36页 |
| ·胚乳细胞PCD发生的机理 | 第36-37页 |
| ·胚乳PCD时间延长的原因和在农业生产上的意义 | 第37-38页 |
| ·淹水与小麦籽粒重量的关系 | 第38页 |
| ·淹水加剧小麦胚乳细胞PCD的进程的原因 | 第38-40页 |
| ·淹水对胚乳细胞中淀粉质体发育的影响 | 第40-41页 |
| ·后续研究的可能方向 | 第41-42页 |
| 参考文献 | 第42-52页 |
| 附录1 论文图版 | 第52-71页 |
| 附录2 在读期间发表和拟发表的文章 | 第71-72页 |
| 致谢 | 第72页 |