摘要 | 第1-8页 |
ABSTRACT | 第8-10页 |
缩略语表 | 第10-11页 |
1 前言 | 第11-26页 |
·通气组织的功能与分类 | 第11-13页 |
·通气组织的功能 | 第11-12页 |
·通气组织的分类 | 第12-13页 |
·编程性细胞死亡的检测与特征 | 第13-16页 |
·编程性细胞死亡的检测方法 | 第13-14页 |
·编程性细胞死亡的特征 | 第14-16页 |
·溶生性通气组织形成的信号通路 | 第16-24页 |
·乙烯 | 第17-19页 |
·活性氧 | 第19页 |
·Ca~(2+) | 第19-21页 |
·Ca~(2+)-ATPase | 第21-22页 |
·钙调素 | 第22-23页 |
·溶生性通气组织形成过程中细胞壁降解相关酶 | 第23-24页 |
·作物渍水胁迫下根形成通气组织研究进展 | 第24-25页 |
·本研究的目的 | 第25-26页 |
2 材料与方法 | 第26-29页 |
·材料培养、处理与取材 | 第26页 |
·通气组织显微结构观察 | 第26页 |
·小麦次生根中皮层细胞壁超微结构观察 | 第26-27页 |
·小麦次生根纤维素酶超微细胞化学定位 | 第27页 |
·小麦次生根TUNEL实验 | 第27-28页 |
·小麦次生根DNA laddering | 第28页 |
·小麦次生根Ca~(2+)荧光观察 | 第28页 |
·小麦次生根中皮层Ca~(2+)超微细胞化学定位 | 第28-29页 |
·小麦次生根中皮层Ca~(2+)-ATPase超微细胞化学定位 | 第29页 |
3 结果与分析 | 第29-35页 |
·小麦次生根通气组织显微结构 | 第29-30页 |
·小麦次生根中皮层细胞壁超微结构观察 | 第30页 |
·小麦次生根纤维素酶超微细胞化学定位 | 第30-31页 |
·小麦次生根TUNEL实验 | 第31-32页 |
·小麦次生根DNA laddering | 第32-33页 |
·小麦次生根Ca~(2+)荧光观察 | 第33页 |
·小麦次生根中皮层Ca~(2+)超微细胞化学定位 | 第33-34页 |
·小麦次生根中皮层Ca~(2+)-ATPase超微细胞化学定位 | 第34-35页 |
4 讨论 | 第35-41页 |
·小麦根皮层溶生性通气组织的结构特征 | 第35-36页 |
·通气组织形成过程中细胞壁的降解与纤维素酶的关系 | 第36页 |
·小麦根皮层PCD过程中DNA断裂的检测 | 第36-38页 |
·TUNEL检测方法的选择 | 第36-37页 |
·TUNEL实验的局限 | 第37页 |
·通过TUNEL比较孕穗期和幼苗期小麦次生根PCD的差异 | 第37-38页 |
·小麦次生根细胞核内DNA的断裂 | 第38页 |
·Ca~(2+)在小麦次生根中皮层细胞选择性死亡中的作用 | 第38-39页 |
·Ca~(2+)和Ca~(2+)-ATPase的时空分布与细胞壁降解的关系 | 第39页 |
·后续研究的可能方向 | 第39-41页 |
·小麦次生根中柱有很多未解之谜 | 第39-40页 |
·小麦次生根细胞壁降解相关酶类 | 第40-41页 |
参考文献 | 第41-51页 |
附录1 论文图版 | 第51-69页 |
附录2 在读期间发表和拟发表的论文 | 第69-70页 |
致谢 | 第70页 |