| 摘要 | 第7-9页 |
| Abstract | 第9-11页 |
| 缩略语表 | 第12-14页 |
| 第一章 文献综述 | 第14-36页 |
| 1.1 生物圈氮循环与农业生产 | 第14-16页 |
| 1.2 共生固氮研究进展 | 第16-26页 |
| 1.2.1 生物固氮的种类 | 第16页 |
| 1.2.2 共生固氮的起源 | 第16-17页 |
| 1.2.3 共生固氮研究进展 | 第17-26页 |
| 1.3 植物激素参与结瘤信号调控 | 第26-30页 |
| 1.4 CRISPR/Cas9技术在植物研究中的应用 | 第30-36页 |
| 第二章 CRISPR/Cas9技术在百脉根中的应用研究 | 第36-68页 |
| 2.1 前言 | 第36-38页 |
| 2.2 材料与方法 | 第38-51页 |
| 2.2.1 材料 | 第38-40页 |
| 2.2.2 方法 | 第40-51页 |
| 2.3 结果与分析 | 第51-64页 |
| 2.3.1 YF-FP报告系统验证改造的CRISPR/Cas9系统 | 第51-52页 |
| 2.3.2 CRISPR/Cas9介导LjSYMRK功能缺失 | 第52-58页 |
| 2.3.3 CRISPR/Cas9诱导LjLb1/2/3基因失活和大片段缺失 | 第58-62页 |
| 2.3.4 LjLb1/2/3基因稳定转化突变体的获得 | 第62-64页 |
| 2.3.5 瘤特异性表达Cas9实现基因敲除 | 第64页 |
| 2.4 总结与讨论 | 第64-68页 |
| 第三章 组氨酸磷酸转移酶在百脉根根瘤共生中的功能 | 第68-101页 |
| 3.1 前言 | 第68-71页 |
| 3.2 材料与方法 | 第71-81页 |
| 3.2.1 材料 | 第71-74页 |
| 3.2.2 方法 | 第74-81页 |
| 3.3 结果与分析 | 第81-97页 |
| 3.3.1 LjLHPs蛋白序列分析 | 第81页 |
| 3.3.2 qRT-PCR检测LHPs基因表达 | 第81-82页 |
| 3.3.3 LHKs与LHPs的蛋白互作 | 第82-86页 |
| 3.3.4 LHPs蛋白亚细胞定位分析 | 第86-87页 |
| 3.3.5 LHPs基因时空表达分析 | 第87-89页 |
| 3.3.6 LHPs在结瘤过程中的功能 | 第89-90页 |
| 3.3.7 LHPs与下游LjARRs的互作 | 第90-91页 |
| 3.3.8 LjARRs基因的表达模式 | 第91页 |
| 3.3.9 LHPs与下游LjBRRs的互作 | 第91-96页 |
| 3.3.10 LjBRRs基因的表达模式 | 第96-97页 |
| 3.4 总结与讨论 | 第97-101页 |
| 3.4.1 LHPs属于多基因家族 | 第97-98页 |
| 3.4.2 LHPs在介导共生信号转导中存在功能冗余 | 第98-99页 |
| 3.4.3 LHPs和LjRRs的相互作用 | 第99-100页 |
| 3.4.4 工作展望 | 第100-101页 |
| 第四章 SDK受体激酶在百脉根根瘤共生中的功能 | 第101-122页 |
| 4.1 前言 | 第101-104页 |
| 4.2 材料与方法 | 第104页 |
| 4.3 结果与分析 | 第104-119页 |
| 4.3.1 LjSDK蛋白结构域分析 | 第104-105页 |
| 4.3.2 LjSDK蛋白亚细胞定位 | 第105-106页 |
| 4.3.3 LjSDK时空表达分析 | 第106-109页 |
| 4.3.4 LjSDK生物学功能 | 第109-117页 |
| 4.3.5 LjSDK在共生信号中潜在的分子机制 | 第117-119页 |
| 4.4 总结与讨论 | 第119-122页 |
| 4.4.1 LjSDK基因编码一个G-type Lectin RLK | 第119-120页 |
| 4.4.2 LjSDK参与根瘤菌侵染过程 | 第120-121页 |
| 4.4.3 工作展望 | 第121-122页 |
| 参考文献 | 第122-140页 |
| 附录一 CRISPR/Cas9课题引物列表 | 第140-141页 |
| 附录二 本研究使用qRT-PCR引物列表 | 第141-143页 |
| 附录三 论文发表情况 | 第143-144页 |
| 致谢 | 第144-145页 |
