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锰离子和N,N-二甲基甲酰胺诱导里氏木霉高产纤维素酶的机制研究

摘要第5-7页
Abstract第7-8页
第1章 研究背景第13-33页
    1.1 里氏木霉(Trichoderma reesei)概述第13-16页
    1.2 纤维素酶及其应用第16-19页
        1.2.1 纤维素酶第16-17页
        1.2.2 纤维素酶的应用第17-19页
    1.3 转录因子调控纤维素酶基因的表达第19页
    1.4 通过代谢工程手段促进纤维素酶生产第19-20页
    1.5 钙信号通路主要组分及功能第20-24页
        1.5.1 钙信号通路综述第20页
        1.5.2 钙信号通路主要组分及功能第20-23页
        1.5.3 环境刺激下胞内Ca~(2+)的响应第23-24页
    1.6 锰离子(Mn~(2+))对真菌代谢影响的研究进展第24-28页
        1.6.1 Mn~(2+)的吸收、转运机制第24-26页
        1.6.2 Mn~(2+)的解毒机制第26-28页
        1.6.3 PMR1对Mn~(2+)和Ca~(2+)的平衡第28页
    1.7 N,N-二甲基甲酰胺(DMF)及其应用第28-30页
        1.7.1 DMF概述及应用第28-29页
        1.7.2 含DMF废水处理方法及优缺点第29页
        1.7.3 生物法处理含DMF废水的研究进展第29-30页
    1.8 本论文研究内容及意义第30-33页
        1.8.1 研究内容第30-32页
        1.8.2 研究意义第32-33页
第2章 Mn~(2+)诱导T.reesei纤维素酶的高产机制第33-78页
    2.1 引言第33页
    2.2 材料第33-43页
        2.2.1 菌株与质粒第33-34页
        2.2.2 引物序列第34-37页
        2.2.3 主要试剂和耗材第37-38页
        2.2.4 常用试剂配制第38-39页
        2.2.5 主要培养基配制第39-42页
        2.2.6 主要仪器和设备第42-43页
        2.2.7 实验所用程序及软件第43页
    2.3 实验方法第43-59页
        2.3.1 常规基因操作第43-47页
        2.3.2 根瘤农杆菌介导的结合转移第47-50页
        2.3.3 T.reesei RNA提取,反转录合成cDNA及RT-qPCR分析第50-51页
        2.3.4 纤维素酶酶活力测定及蛋白浓度测定第51-54页
        2.3.5 T.reesei菌体生物质含量测定第54-55页
        2.3.6 Mn~(2+)的使用第55页
        2.3.7 其他试剂的使用第55页
        2.3.8 T.reesei菌体生长检测第55页
        2.3.9 胞内外Mn~(2+)含量的测定第55页
        2.3.10 胞内钙离子(Ca~(2+))荧光检测第55-56页
        2.3.11 质粒构建和转化第56-59页
        2.3.12 稳定性分析第59页
    2.4 实验结果与讨论第59-77页
        2.4.1 Mn~(2+)处理对T.reesei影响的研究第59-62页
        2.4.2 添加10mM Mn~(2+)对胞内外Mn~(2+)浓度的影响第62页
        2.4.3 T.reesei中锰转运蛋白的鉴定第62-65页
        2.4.4 锰转运蛋白TPH084-1和TPH084-2的亚细胞定位第65-66页
        2.4.5 锰转运蛋白参与Mn~(2+)诱导的纤维素酶生产第66-69页
        2.4.6 Mn~(2+)诱导提高胞内Ca~(2+)含量第69-71页
        2.4.7 Mn~(2+)诱导下,钙通道抑制剂对胞内Ca~(2+)和纤维素酶表达的影响第71-72页
        2.4.8 Mn~(2+)诱导下,CRZ1参与调控纤维素酶表达第72-74页
        2.4.9 Mn~(2+)诱导下,TPMR1参与调控Ca~(2+)/Mn~(2+)及纤维素酶表达第74-77页
    2.5 本章小结第77-78页
第3章 DMF调控T.reesei纤维素酶的表达和分泌第78-98页
    3.1 引言第78页
    3.2 材料第78-79页
        3.2.1 菌株与质粒第78页
        3.2.2 引物序列第78-79页
        3.2.3 主要试剂耗材及仪器设备第79页
        3.2.4 培养基及试剂配制第79页
        3.2.5 实验所用程序及软件第79页
        3.2.6 稳定性分析第79页
    3.3 实验方法第79-81页
        3.3.1 DMF的使用第79页
        3.3.2 其他试剂的使用第79-80页
        3.3.3 T.reesei菌体生长检测第80页
        3.3.4 敲除质粒构建和转化第80页
        3.3.5 胞内Ca~(2+)检测第80页
        3.3.6 细胞通透性检测第80页
        3.3.7 转录组测序及数据处理第80-81页
        3.3.8 稳定性分析第81页
    3.4 实验结果与讨论第81-96页
        3.4.1 偶然发现—DMF诱导T.reesei高产纤维素酶第81-82页
        3.4.2 外源DMF处理对T.reesei影响的研究第82-84页
        3.4.3 外源DMF处理增加T.reesei细胞的通透性第84-85页
        3.4.4 外源DMF处理对T.reesei纤维素酶相关基因转录水平的影响第85-86页
        3.4.5 转录组测序为DMF诱导的纤维素酶过表达提供了新的见解第86-89页
        3.4.6 钙信号参与DMF诱导的T.reesei中纤维素酶的过表达第89-90页
        3.4.7 DMF诱导的胞内Ca~(2+)增加参与纤维素酶的过表达第90-92页
        3.4.8 DMF通过钙信号通路诱导T.reesei高产纤维素酶第92-94页
        3.4.9 DMF和Mn~(2+)联合应用可显著提高T.reesei Rut-C30的纤维素酶产量第94-95页
        3.4.10 利用DMF开发新的诱导剂的展望第95-96页
    3.5 本章小结第96-98页
第4章 利用基因工程改造的T.reesei降解废水中DMF第98-115页
    4.1 引言第98页
    4.2 材料第98-101页
        4.2.1 菌株与质粒第98页
        4.2.2 引物序列第98-99页
        4.2.3 主要仪器和设备第99页
        4.2.4 主要试剂和耗材第99-100页
        4.2.5 常用试剂配制第100页
        4.2.6 主要培养基配制第100-101页
        4.2.7 实验所用程序及软件第101页
        4.2.8 稳定性分析第101页
    4.3 实验方法第101-104页
        4.3.1 DMF及其类似物色谱条件第101页
        4.3.2 DMF标准样品制备第101页
        4.3.3 DMF的使用第101页
        4.3.4 木聚糖酶Ⅰ和木聚糖酶Ⅱ活力测定第101-102页
        4.3.5 纤维素酶对玉米秸秆的糖化水解第102页
        4.3.6 载体构建第102-103页
        4.3.7 异源基因在大肠杆菌(E.coli)的诱导表达第103页
        4.3.8 聚丙烯酰胺凝胶电泳(SDS-PAGE)第103页
        4.3.9 N,N-dimethylformamidase (DMFase)酶活力测定第103页
        4.3.10 DMFase酶学性质测定第103-104页
    4.4 实验结果与讨论第104-113页
        4.4.1 DMF标准曲线的绘制第104页
        4.4.2 工业发酵培养基中,DMF对T.reesei Rut-C30影响的研究第104-108页
        4.4.3 DMFase的筛选第108页
        4.4.4 DMFase的异源表达第108-109页
        4.4.5 DMFase的酶学性质鉴定第109-110页
        4.4.6 DMFase的底物特异性第110-111页
        4.4.7 DMF降解途径引入T.reesei细胞第111-112页
        4.4.8 DMF诱导纤维素酶高产与DMF废水降解利用的“一箭双雕”第112-113页
    4.5 本章小结第113-115页
第5章 总结与展望第115-118页
    5.1 总结第115-116页
    5.2 展望第116-118页
参考文献第118-135页
攻读博士学位期间发表的论文第135-136页
致谢第136页

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