| 摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-10页 |
| 引言 | 第14-16页 |
| 1 综述：小胶质细胞与帕金森氏病 | 第16-30页 |
| 1.1 神经炎症反应 | 第16-18页 |
| 1.2 胶质细胞的研究历程与起源 | 第18-25页 |
| 1.2.1 小胶质细胞与炎症反应 | 第20-22页 |
| 1.2.2 小胶质细胞的调控因素 | 第22-24页 |
| 1.2.3 星形胶质细胞与炎症反应 | 第24-25页 |
| 1.3 炎症反应与疾病 | 第25-27页 |
| 1.3.1 小胶质细胞与神经退行性疾病 | 第25-27页 |
| 1.4 炎症反应与PGC-1α | 第27-29页 |
| 1.4.1 PGC-1α的作用 | 第27页 |
| 1.4.2 PGC-1α对炎症反应的影响 | 第27-29页 |
| 1.5 展望 | 第29-30页 |
| 2 实验一 PGC-1α与小胶质细胞双标记及病毒转染小胶质细胞 | 第30-35页 |
| 2.1 材料与方法 | 第30-32页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第30页 |
| 2.1.2 仪器与试剂 | 第30页 |
| 2.1.3 实验方法和步骤 | 第30-32页 |
| 2.2 实验结果 | 第32-35页 |
| 2.2.1 PGC-1α过表达后PD小鼠黑质胶质细胞激增 | 第32页 |
| 2.2.2 PGC-1α与Iba1和GFAP双标记 | 第32-34页 |
| 2.2.3 慢病毒转染小胶质细胞 | 第34-35页 |
| 3 实验二 PGC-1α过表达对小胶质细胞极化的影响 | 第35-47页 |
| 3.1 材料与方法 | 第35-40页 |
| 3.1.1 实验动物 | 第35页 |
| 3.1.2 仪器与试剂 | 第35-36页 |
| 3.1.3 实验方法和步骤 | 第36-40页 |
| 3.2 实验结果 | 第40-47页 |
| 3.2.1 MPTP对小胶质细胞极性的影响 | 第40页 |
| 3.2.2 PGC-1α过表达对PD模型小鼠行为学影响 | 第40-42页 |
| 3.2.3 PGC-1α和TH蛋白在各组表达情况 | 第42-43页 |
| 3.2.4 PGC-1α过表达后对M1型小胶质细胞表达影响 | 第43-45页 |
| 3.2.5 PGC-1α过表达对小胶质细胞M2极性表达影响 | 第45-47页 |
| 4 实验三 PGC-1α干扰对小胶质细胞极化的影响 | 第47-54页 |
| 4.1 材料与方法 | 第47-48页 |
| 4.1.1 实验动物 | 第47页 |
| 4.1.2 仪器与试剂 | 第47页 |
| 4.1.3 实验方法和步骤 | 第47-48页 |
| 4.2 实验结果 | 第48-54页 |
| 4.2.1 PGC-1α干扰后对各组小鼠行为学影响 | 第48-49页 |
| 4.2.2 PGC-1α干扰后各组PGC-1α和TH表达情况 | 第49-50页 |
| 4.2.3 PGC-1α干扰后对M1型小胶质细胞表达影响 | 第50-52页 |
| 4.2.4 PGC-1α干扰的PD小鼠模型M2型小胶质细胞表达情况 | 第52-54页 |
| 5 实验四 米诺环素联合PGC-1α过表达对小胶质细胞的影响 | 第54-59页 |
| 5.1 材料与方法 | 第54-56页 |
| 5.1.1 实验动物 | 第54页 |
| 5.1.2 仪器与试剂 | 第54页 |
| 5.1.3 实验方法和步骤 | 第54-56页 |
| 5.2 实验结果 | 第56-59页 |
| 5.2.1 米诺环素联合PGC-1α过表达增加多巴胺能神经元表达 | 第56-57页 |
| 5.2.2 米诺环素联合PGC-1α过表达降低小胶质细胞的表达 | 第57-58页 |
| 5.2.3 米诺环素联合PGC-1α过表达降低PD小鼠黑质iNOS的表达 | 第58-59页 |
| 6 讨论 | 第59-62页 |
| 7 结论 | 第62-64页 |
| 参考文献 | 第64-75页 |
| 附录 | 第75-77页 |
| 后记(含致谢) | 第77-78页 |
| 攻读硕士学位期间取得的科研成果清单 | 第78页 |
| 攻读硕士学位期间参加研究的课题 | 第78页 |
