| 学位论文数据集 | 第3-4页 |
| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-8页 |
| 符号说明 | 第15-16页 |
| 第一章 绪论 | 第16-26页 |
| 1.1 癌症及其治疗 | 第16页 |
| 1.2 抗菌肽与抗肿瘤多肽 | 第16-19页 |
| 1.2.1 抗肿瘤多肽的分类 | 第16-17页 |
| 1.2.2 抗肿瘤多肽的作用机制 | 第17-18页 |
| 1.2.3 抗肿瘤多肽的优点与不足 | 第18-19页 |
| 1.3 多肽的自组装 | 第19-20页 |
| 1.3.1 多肽自组装的影响因素 | 第19页 |
| 1.3.2 多肽自组装的驱动力 | 第19-20页 |
| 1.3.3 多肽自组装的优势 | 第20页 |
| 1.4 多肽自组装性质的表征 | 第20-22页 |
| 1.4.1 1,8-ANS荧光光谱 | 第20页 |
| 1.4.2 临界胶束浓度 | 第20-21页 |
| 1.4.3 圆二色光谱 | 第21页 |
| 1.4.4 透射电镜 | 第21-22页 |
| 1.4.5 粒径与Zeta电位 | 第22页 |
| 1.4.7 MTT法检测抗肿瘤多肽的细胞毒性 | 第22页 |
| 1.5 多肽自组装提高稳定性 | 第22-23页 |
| 1.6 死活细胞染色实验检测多肽的膜裂解能力 | 第23页 |
| 1.7 靶向抗肿瘤多肽的研究 | 第23-24页 |
| 1.8 pH响应性研究 | 第24页 |
| 1.9 体内活性研究 | 第24-25页 |
| 1.9.1 腹腔注射给药 | 第24-25页 |
| 1.9.2 瘤旁注射给药 | 第25页 |
| 1.10 主要研究内容及意义 | 第25-26页 |
| 第二章 多重靶向抗肿瘤多肽的设计与活性机理研究 | 第26-40页 |
| 2.1 实验材料和仪器 | 第26-27页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第26-27页 |
| 2.1.2 实验仪器 | 第27页 |
| 2.2 实验方法 | 第27-40页 |
| 2.2.1 多肽的设计 | 第27-29页 |
| 2.2.2 多肽的筛选 | 第29-31页 |
| 2.2.3 多肽的表征 | 第31-34页 |
| 2.2.4 pH响应性试验 | 第34页 |
| 2.2.5 血清稳定性实验 | 第34-35页 |
| 2.2.6 多肽的体外细胞活性研究 | 第35页 |
| 2.2.7 死活细胞染色实验 | 第35-36页 |
| 2.2.8 多肽的靶向性研究 | 第36-37页 |
| 2.2.8.1 酶切位点的验证 | 第36-37页 |
| 2.2.8.2 肿瘤细胞靶向性 | 第37页 |
| 2.2.9 多重靶向抗肿瘤多肽的体内活性研究 | 第37-40页 |
| 第三章 结果与讨论 | 第40-58页 |
| 3.1 多肽的活性筛选 | 第40-42页 |
| 3.1.1 LIG系列多肽的细胞活性筛选 | 第40-41页 |
| 3.1.2 正反序列多肽的细胞活性筛选 | 第41页 |
| 3.1.3 正反序列多肽的MIC筛选 | 第41-42页 |
| 3.2 多肽的表征 | 第42-48页 |
| 3.2.1 多肽的二级结构分析 | 第42-44页 |
| 3.2.2 1,8-ANS荧光光谱表征多肽的自组装 | 第44-45页 |
| 3.2.3 多肽的临界胶束浓度测定 | 第45-46页 |
| 3.2.4 透射电镜观察多肽的微观形态 | 第46页 |
| 3.2.5 多肽的粒径和Zeta电位测定 | 第46-48页 |
| 3.3 pH对自组装的影响 | 第48-49页 |
| 3.4 血清稳定性 | 第49-50页 |
| 3.5 多肽的体外细胞活性研究 | 第50页 |
| 3.6 死活细胞染色实验 | 第50-51页 |
| 3.7 多肽的靶向性研究 | 第51-54页 |
| 3.7.1 酶切位点的验证 | 第51-53页 |
| 3.7.2 多肽LIG-8的肿瘤细胞靶向性 | 第53-54页 |
| 3.8 多重靶向抗肿瘤多肽的体内活性研究 | 第54-58页 |
| 3.8.1 多肽LIG-8对HeLa细胞裸鼠皮下肿瘤大小的影响 | 第54-55页 |
| 3.8.2 多肽LIG-8对荷瘤裸鼠体重的影响: | 第55-58页 |
| 第四章 结论 | 第58-60页 |
| 参考文献 | 第60-66页 |
| 致谢 | 第66-68页 |
| 研究成果及发表的论文 | 第68-70页 |
| 作者及导师简介 | 第70-72页 |
| 附件 | 第72-73页 |