| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 中英文缩略词对照 | 第9-13页 |
| 1文献综述 | 第13-20页 |
| 1.1 浒苔多糖的生物学活性 | 第13-19页 |
| 1.1.1 浒苔多糖的降血脂作用 | 第13-14页 |
| 1.1.2 浒苔多糖的抗氧化活性 | 第14-15页 |
| 1.1.3 浒苔多糖的抗肿瘤活性 | 第15-16页 |
| 1.1.4 浒苔多糖对免疫功能的调节作用 | 第16-18页 |
| 1.1.5 浒苔多糖的抗菌、抗病毒与抗炎活性 | 第18-19页 |
| 1.2 本课研究的目的与意义 | 第19-20页 |
| 2浒苔多糖的分离纯化 | 第20-29页 |
| 2.1 材料 | 第20-21页 |
| 2.1.1 浒苔 | 第20页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第20页 |
| 2.1.3 试剂的配制 | 第20-21页 |
| 2.1.4 主要仪器 | 第21页 |
| 2.2 方法 | 第21-22页 |
| 2.2.1 浒苔多糖的提取 | 第21-22页 |
| 2.2.2 浒苔多糖的分离纯化 | 第22页 |
| 2.3 浒苔多糖各组分含量的测定 | 第22-24页 |
| 2.3.1 蛋白质含量的测定 | 第22-23页 |
| 2.3.2 多糖含量的测定 | 第23页 |
| 2.3.3 糖醛酸含量的测定 | 第23页 |
| 2.3.4 硫酸根含量的测定 | 第23页 |
| 2.3.5 多糖各组分的凝胶电泳 | 第23-24页 |
| 2.4 统计方法 | 第24页 |
| 2.5 试验结果 | 第24-28页 |
| 2.5.1 浒苔多糖的Sephacryl-300层析柱洗脱曲线 | 第24页 |
| 2.5.2 浒苔多糖中蛋白质含量测定 | 第24-25页 |
| 2.5.3 浒苔多糖中多糖含量的测定 | 第25-26页 |
| 2.5.4 浒苔多糖中硫酸根含量测定 | 第26-27页 |
| 2.5.5 浒苔多糖中糖醛酸含量测定 | 第27页 |
| 2.5.6 浒苔多糖不同组分的电泳鉴定结果 | 第27-28页 |
| 2.6 讨论 | 第28-29页 |
| 3浒苔多糖免疫调节活性组分的筛选 | 第29-42页 |
| 3.1 材料 | 第29-30页 |
| 3.1.1EP、EP1、Ep2和EP3 | 第29页 |
| 3.1.2 实验动物 | 第29页 |
| 3.1.3 主要试剂 | 第29页 |
| 3.1.4 相关试剂的配制方法 | 第29-30页 |
| 3.2 主要仪器 | 第30-31页 |
| 3.3 方法 | 第31-33页 |
| 3.3.1 淋巴细胞悬液的制备 | 第31页 |
| 3.3.2 T、B淋巴细胞的分选及其制备 | 第31页 |
| 3.3.3 小鼠腹腔巨噬细胞液的制备 | 第31-32页 |
| 3.3.4 EP、EP1、EP2和EP3对T、B和淋巴细胞和Mφ细胞增殖活性的作用 | 第32页 |
| 3.3.5 4种浒苔多糖组分对Mφ细胞NO分泌的影响 | 第32-33页 |
| 3.3.6 淋巴细胞和Mφ细胞中多糖的分布(PAS染色法) | 第33页 |
| 3.3.7 淋巴细胞和Mφ细胞中RNA的检测（甲基绿-派洛宁染色法） | 第33页 |
| 3.4 统计分析方法 | 第33页 |
| 3.5 结果 | 第33-40页 |
| 3.5.1 浒苔多糖各组分对T、B淋巴细胞增殖的影响 | 第33-35页 |
| 3.5.2 浒苔多糖各组分对Mφ细胞细胞活性的影响 | 第35页 |
| 3.5.3 浒苔多糖各组分对Mφ细胞分泌NO影响 | 第35-36页 |
| 3.5.4 多糖在T、B淋巴细胞和Mφ细胞中的分布情况 | 第36-38页 |
| 3.5.5 浒苔多糖对T、B淋巴细胞内RNA合成的影响 | 第38-40页 |
| 3.6 讨论 | 第40-42页 |
| 4.浒苔多糖对小鼠免疫功能的影响 | 第42-54页 |
| 4.1 材料 | 第42-43页 |
| 4.1.1Ep2 | 第42页 |
| 4.1.2 实验动物 | 第42页 |
| 4.1.3 主要试剂 | 第42页 |
| 4.1.4 相关试剂配制 | 第42-43页 |
| 4.2 主要仪器设备 | 第43页 |
| 4.3 方法 | 第43-46页 |
| 4.3.1 小鼠免疫模型的建立以及分组处理 | 第43-44页 |
| 4.3.2 小鼠器官指数测定及血象分析 | 第44页 |
| 4.3.3 EP2对小鼠巨噬细胞吞噬功能的影响 | 第44页 |
| 4.3.4 EP2对小鼠迟发型变态反应的影响(耳肿法) | 第44-45页 |
| 4.3.5 EP2对INF-γ、IL-2、TNF-α和IL-4分泌的影响 | 第45页 |
| 4.3.6 EP2对小鼠淋巴细胞转化的影响 | 第45页 |
| 4.3.7 EP2对小鼠T淋巴细胞亚群的影响 | 第45页 |
| 4.3.8 EP2对小鼠特异性免疫应答的影响 | 第45-46页 |
| 4.4 数据分析 | 第46页 |
| 4.5 结果 | 第46-50页 |
| 4.5.1 EP2对小鼠的免疫器官指数的影响 | 第46-47页 |
| 4.5.2 EP2对小鼠血象的影响 | 第47页 |
| 4.5.3 EP2对小鼠腹腔巨噬细胞吞噬功能的影响 | 第47-48页 |
| 4.5.4 EP2对小鼠迟发性超敏反应(DHT)的影响 | 第48页 |
| 4.5.5 EP2对小鼠T、B淋巴细胞转化的影响 | 第48-49页 |
| 4.5.6 EP2对小鼠T淋巴细胞亚群的影响 | 第49页 |
| 4.5.7 EP2对小鼠相关细胞因子的影响 | 第49-50页 |
| 4.5.8 EP2对小鼠特异性免疫应答的影响 | 第50页 |
| 4.6 讨论 | 第50-54页 |
| 4.6.1 小鼠免疫抑制模型的建立 | 第50-51页 |
| 4.6.2 EP2对小鼠免疫器官及血象的影响 | 第51页 |
| 4.6.3 EP2对小鼠腹腔巨噬功能的影响 | 第51-52页 |
| 4.6.4 EP2对小鼠迟发性超敏反应(DHT)的影响 | 第52页 |
| 4.6.5 EP2对小鼠T、B淋巴细胞转化作用的影响 | 第52页 |
| 4.6.6 EP2对小鼠相关细胞因子及特异性免疫应答的影响 | 第52-54页 |
| 5小结 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-62页 |
| 致谢 | 第62-63页 |
| 作者简介 | 第63-64页 |
| 导师简介 | 第64页 |
