摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
中英文缩略词 | 第17-18页 |
前言 | 第18-23页 |
第一章 制剂学研究 | 第23-40页 |
1 仪器与试剂 | 第23-24页 |
1.1 仪器 | 第23页 |
1.2 试剂 | 第23-24页 |
2 试验方法 | 第24-27页 |
2.1 TiO_2-Fe_3O_4-PEI的制备 | 第24-25页 |
2.1.1 共沉淀法制备Fe_3O_4磁性粒子 | 第24页 |
2.1.2 制备磁性液体 | 第24-25页 |
2.1.3 包覆TiO_2,并进行活化——溶胶凝胶法 | 第25页 |
2.2 TiO_2-Fe_3O_4-PEI负载阿霉素 | 第25页 |
2.3 TiO_2-Fe_3O_4-PEI含量测定方法的建立 | 第25-26页 |
2.3.1 DOX的UV-Vis全波长扫描 | 第25页 |
2.3.2 标准曲线建立 | 第25-26页 |
2.4 阿霉素(DOX)含量测定方法的建立 | 第26页 |
2.4.1 DOX检测波长的确定 | 第26页 |
2.4.2 DOX标准曲线的建立 | 第26页 |
2.5 载药率的测定 | 第26-27页 |
2.5.1 超滤法测定游离药物含量 | 第26页 |
2.5.2 方法回收率试验 | 第26-27页 |
2.6 体外释药试验 | 第27页 |
2.7 磁滞曲线 | 第27页 |
3 试验结果 | 第27-38页 |
3.1 TiO_2-Fe_3O_4-PEI含量测定方法的建立 | 第27-29页 |
3.1.1 TiO_2-Fe_3O_4-PEI全波长扫描 | 第27页 |
3.1.2 DOX及TiO_2-Fe_3O_4-PEI/DOX全波长扫描 | 第27页 |
3.1.3 TiO_2-Fe_3O_4-PEI的UV-Vis标准曲线 | 第27-29页 |
3.2 阿霉素(DOX)含量测定方法的建立 | 第29-32页 |
3.2.1 DOX荧光检测波长的确定 | 第29-30页 |
3.2.2 专属性试验 | 第30-31页 |
3.2.3 DOX的标准曲线 | 第31页 |
3.2.4 回收率结果 | 第31页 |
3.2.5 精密度结果 | 第31-32页 |
3.3 TEM及SEM表征 | 第32-33页 |
3.4 TiO_2-Fe_3O_4的EDS图谱 | 第33页 |
3.5 红外表征 | 第33-34页 |
3.6 TiO_2-Fe_3O_4-PEI的粒径电位表征 | 第34-35页 |
3.7 方法回收率 | 第35页 |
3.8 TiO_2-Fe_3O_4-PEI-DOX的投料比的选择 | 第35-36页 |
3.9 释药 | 第36-38页 |
4 讨论 | 第38-40页 |
第二章 细胞学研究 | 第40-59页 |
1 实验试剂及仪器 | 第40-42页 |
1.1 试剂 | 第40页 |
1.2 仪器与设备 | 第40-41页 |
1.3 主要试剂的配制 | 第41-42页 |
2 试验方法 | 第42-45页 |
2.1 人肝癌细胞SMMC-7721的培养 | 第42页 |
2.2 人肝癌细胞SMMC-7721生长曲线的绘制 | 第42页 |
2.3 载体对SMMC-7721的毒性 | 第42-43页 |
2.4 SRB法比较TiO_2-Fe_3O_4-PEI-DOX和DOX对SMMC-7721的抑制情况26 | 第43页 |
2.5 808nm激光照射后TiO_2-Fe_3O_4-PEI-DOX和TiO_2-Fe_3O_4-PEI的光疗效果 | 第43-44页 |
2.5.1 808nm激光照射下的体外发热效率实验 | 第43页 |
2.5.2 细胞内活性氧检测 | 第43-44页 |
2.5.3 808nm激光照射下TiO_2-Fe_3O_4-PEI-DOX和TiO_2-Fe_3O_4-PEI对SMMC-7721的增殖抑制作用 | 第44页 |
2.6 SMMC-7721对制剂的吞噬摄取情况 | 第44页 |
2.7 细胞周期阻滞 | 第44-45页 |
2.8 细胞凋亡检测 | 第45页 |
3 实验结果 | 第45-57页 |
3.1 SMMC-7721细胞的生长曲线 | 第45-46页 |
3.2 TiO_2-Fe_3O_4-PEI对SMMC-7721的细胞毒性结果 | 第46-47页 |
3.3 TiO_2-Fe_3O_4-PEI-DOX以及DOX对SMMC-7721增殖抑制比较 | 第47-50页 |
3.4 808nm激光照射后TiO_2-Fe_3O_4-PEI和TiO_2-Fe_3O_4-PEI-DOX的光疗效果 | 第50-53页 |
3.5 SMMC-7721细胞对TiO_2-Fe_3O_4-PEI-DOX及DOX的摄取 | 第53-54页 |
3.6 SMMC-7721细胞的周期阻滞 | 第54-56页 |
3.7 细胞的凋亡 | 第56-57页 |
4 讨论 | 第57-59页 |
第三章 阿霉素靶向制剂的体内活性研究 | 第59-85页 |
1 试剂与仪器 | 第59-60页 |
1.1 试剂 | 第59页 |
1.2 仪器 | 第59-60页 |
2 实验方法 | 第60-64页 |
2.1 TiO_2-Fe_3O_4-PEI-DOX复合物的药物代谢动力学研究 | 第60-62页 |
2.1.1 实验模型动物 | 第60页 |
2.1.2 色谱条件 | 第60页 |
2.1.3 血浆样品预处理方法 | 第60页 |
2.1.4 方法专属性考察 | 第60页 |
2.1.5 DOX体内样品标准曲线的绘制 | 第60-61页 |
2.1.6 方法的精密度 | 第61页 |
2.1.7 回收率实验 | 第61页 |
2.1.8 给药与血浆样品的采集 | 第61页 |
2.1.9 数据处理 | 第61-62页 |
2.2 TiO_2-Fe_3O_4-PEI-DOX的组织分布研究 | 第62-63页 |
2.2.1 实验动物 | 第62页 |
2.2.2 色谱条件 | 第62页 |
2.2.3 小鼠组织样品的预处理 | 第62页 |
2.2.4 方法专属性考察 | 第62页 |
2.2.5 组织样品标准曲线的制备 | 第62-63页 |
2.2.6 精密度实验 | 第63页 |
2.2.7 回收率实验 | 第63页 |
2.2.8 不同时间点各组织器官中的DOX浓度的测定 | 第63页 |
2.3 TiO_2-Fe_3O_4-PEI-DOX对荷S180肉瘤小鼠的药效学实验 | 第63-64页 |
2.3.1 S180荷瘤小鼠模型的构建 | 第63-64页 |
2.3.2 试验分组及数据测量 | 第64页 |
2.3.3 HE染色观察病理变化 | 第64页 |
3 实验结果 | 第64-82页 |
3.1 TiO_2-Fe_3O_4-PEI-DOX药代动力学研究 | 第64-69页 |
3.1.1 专属性 | 第64-65页 |
3.1.2 阿霉素的血浆标准曲线 | 第65-66页 |
3.1.3 方法的精密度 | 第66页 |
3.1.4 血浆阿霉素含量测定的回收率 | 第66-67页 |
3.1.5 大鼠血浆中药物浓度的测定 | 第67-68页 |
3.1.6 药动学数据分析 | 第68-69页 |
3.2 TiO_2-Fe_3O_4-PEI-DOX在小鼠体内组织分布 | 第69-80页 |
3.2.1 专属性考察 | 第69-71页 |
3.2.2 各个组织中的阿霉素的标准曲线及线性范围 | 第71-74页 |
3.2.3 方法的精密度 | 第74页 |
3.2.4 回收率结果 | 第74-77页 |
3.2.5 不同时间点组织中的药物分布特征 | 第77-79页 |
3.2.6 体内分布数据分析 | 第79-80页 |
3.3 TiO_2-Fe_3O_4-PEI-DOX对小鼠S180肉瘤的药效学研究 | 第80-82页 |
3.3.1 治疗期间肿瘤体积的变化 | 第80-81页 |
3.3.2 肿瘤组织HE染色结果 | 第81-82页 |
4 讨论 | 第82-85页 |
全文总结 | 第85-87页 |
参考文献 | 第87-92页 |
个人简介 | 第92-93页 |
致谢 | 第93页 |