| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 缩写词表 | 第13-14页 |
| 第一章 绪论 | 第14-20页 |
| 1.1 极低频电磁场及其生物学效应 | 第14-16页 |
| 1.1.1 极低频电磁场简述 | 第14页 |
| 1.1.2 极低频电磁场诱导ROS积蓄介导氧化损伤 | 第14-16页 |
| 1.2 miRNA研究概况 | 第16-18页 |
| 1.2.1 miRNA简介 | 第16页 |
| 1.2.2 miRNA的生物学作用机制 | 第16-17页 |
| 1.2.3 miRNA与辐射相关生物学效应 | 第17-18页 |
| 1.2.4 天然活性物质对miRNA的调控 | 第18页 |
| 1.3 莲房原花青素 | 第18-19页 |
| 1.3.1 LSPCs简介 | 第18页 |
| 1.3.2 LSPCs抗辐射生物效应 | 第18-19页 |
| 1.4 本论文的研究目的、意义及研究内容 | 第19-20页 |
| 1.4.1 本论文的目的和意义 | 第19页 |
| 1.4.2 本论文主要研究内容 | 第19-20页 |
| 第二章 ELF-EMF诱导ROS积蓄介导海马神经元氧化损伤及LSPCs的预防作用 | 第20-33页 |
| 引言 | 第20-21页 |
| 2.1 实验材料 | 第21页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第21页 |
| 2.1.2 主要实验试剂 | 第21页 |
| 2.1.3 实验仪器设备 | 第21页 |
| 2.2 实验方法 | 第21-24页 |
| 2.2.1 主要试剂配制 | 第21-22页 |
| 2.2.2 辐照装置 | 第22页 |
| 2.2.3 海马神经元的分离和培养 | 第22页 |
| 2.2.4 原代海马神经元分组与辐照 | 第22-23页 |
| 2.2.5 海马神经元内ROS种类及各类含量 | 第23页 |
| 2.2.6 细胞内ROS的来源定位 | 第23页 |
| 2.2.7 细胞内总ROS的含量测定 | 第23页 |
| 2.2.8 海马神经元总抗氧化活力（T-AOC）的测定 | 第23页 |
| 2.2.9 海马神经元中GSH、SOD和SDH含量的测定 | 第23-24页 |
| 2.2.10 海马神经元内MDA含量的测定 | 第24页 |
| 2.2.11 Western blot检测海马神经元中抗氧化物酶相关蛋白表达 | 第24页 |
| 2.2.12 数据统计 | 第24页 |
| 2.3 结果与分析 | 第24-32页 |
| 2.3.1 LSPCs对海马神经元内ROS种类及含量的影响 | 第24-26页 |
| 2.3.2 LSPCs对海马神经元内ROS分布的影响 | 第26页 |
| 2.3.3 LSPCs对海马神经元内ROS总量的影响 | 第26-27页 |
| 2.3.4 LSPCs对海马神经元内总抗氧化能力的影响 | 第27-28页 |
| 2.3.5 LSPCs对海马神经元中GSH、SOD和SDH活力的影响 | 第28-29页 |
| 2.3.6 LSPCs对海马神经元内MDA含量的影响 | 第29-30页 |
| 2.3.7 LSPCs对SOD-1 和SOD-2 蛋白表达的影响 | 第30-31页 |
| 2.3.8 LSPCs对GSH-Px蛋白表达的影响 | 第31-32页 |
| 2.4 本章小结 | 第32-33页 |
| 第三章 ELF-EMF诱导ROS积蓄介导海马神经元凋亡及LSPCs的预防作用 | 第33-47页 |
| 引言 | 第33页 |
| 3.1 实验材料 | 第33-34页 |
| 3.1.1 实验动物 | 第33页 |
| 3.1.2 主要实验试剂 | 第33-34页 |
| 3.1.3 实验仪器设备 | 第34页 |
| 3.2 实验方法 | 第34-36页 |
| 3.2.1 主要试剂配制 | 第34页 |
| 3.2.2 辐照装置 | 第34页 |
| 3.2.3 海马神经元的分离和培养 | 第34页 |
| 3.2.4 原代海马神经元分组与辐照 | 第34页 |
| 3.2.5 细胞存活率检测 | 第34-35页 |
| 3.2.6 海马神经元形态学观察 | 第35页 |
| 3.2.7 线粒体膜电位的检测 | 第35页 |
| 3.2.8 细胞内Ca2+含量测定 | 第35页 |
| 3.2.9 海马神经元的细胞周期检测 | 第35页 |
| 3.2.10 海马神经元Cytochrome C蛋白检测 | 第35页 |
| 3.2.11 Bcl-2 家族蛋白检测 | 第35页 |
| 3.2.12 caspase家族蛋白检测 | 第35-36页 |
| 3.2.13 数据统计 | 第36页 |
| 3.3 结果与分析 | 第36-45页 |
| 3.3.1 LSPCs对海马神经元存活率的影响 | 第36-37页 |
| 3.3.2 LSPCs对海马神经元形态学的影响 | 第37-39页 |
| 3.3.3 LSPCs对海马神经元线粒体膜电位的影响 | 第39-40页 |
| 3.3.4 LSPCs对海马神经元内游离钙离子浓度的影响 | 第40-41页 |
| 3.3.5 LSPCs对海马神经元细胞周期的影响 | 第41-43页 |
| 3.3.6 LSPCs对海马神经元Cytochrome C的释放 | 第43页 |
| 3.3.7 LSPCs对海马神经元Bcl-2 家族蛋白表达的影响 | 第43-44页 |
| 3.3.8 LSPCs对海马神经元caspase家族蛋白表达的影响 | 第44-45页 |
| 3.4 本章小结 | 第45-47页 |
| 第四章 ELF-EMF对海马神经元miRNA表达的影响及LSPCs的调控作用 | 第47-64页 |
| 引言 | 第47页 |
| 4.1 实验材料 | 第47-48页 |
| 4.1.1 实验动物 | 第47页 |
| 4.1.2 主要实验试剂 | 第47-48页 |
| 4.1.3 主要实验设备 | 第48页 |
| 4.2 实验方法 | 第48-49页 |
| 4.2.1 辐照装置 | 第48页 |
| 4.2.2 海马神经元的分离和培养 | 第48页 |
| 4.2.3 原代海马神经元分组与辐照 | 第48页 |
| 4.2.4 RNA提取（Trizol法） | 第48-49页 |
| 4.2.5 RNA质量检测 | 第49页 |
| 4.2.6 富集小RNA | 第49页 |
| 4.2.7 芯片实验及聚类分析 | 第49页 |
| 4.2.8 生物信息学分析 | 第49页 |
| 4.2.9 数据统计 | 第49页 |
| 4.3 结果与分析 | 第49-62页 |
| 4.3.1 海马神经元总RNA的质量检验 | 第49-50页 |
| 4.3.2 miRNA芯片杂交信号扫描图 | 第50-51页 |
| 4.3.3 各组miRNA表达谱差异及聚类分析 | 第51-56页 |
| 4.3.4 三组间差异表达miRNA靶基因GO分析 | 第56-57页 |
| 4.3.5 三组间差异表达miRNA靶基因KEGG Pathway富集性分析 | 第57-58页 |
| 4.3.6 Mi RNA-Gene-Network分析确定关键的miRNA及靶基因 | 第58-60页 |
| 4.3.7 差异表达基因综合途径分析 | 第60-62页 |
| 4.4 本章小结 | 第62-64页 |
| 第五章 结论与展望 | 第64-66页 |
| 5.1 结论 | 第64页 |
| 5.2 展望 | 第64-66页 |
| 参考文献 | 第66-71页 |
| 致谢 | 第71-72页 |
| 在学期间发表的学术论文及其他科研成果 | 第72页 |
