| 摘要 | 第3-4页 |
| ABSTRACT | 第4页 |
| 第一章 前言 | 第9-41页 |
| 1.1 脂肪酸研究概况 | 第9-21页 |
| 1.1.1 脂肪酸 | 第9页 |
| 1.1.2 脂肪酸命名 | 第9页 |
| 1.1.3 脂肪酸的分类 | 第9-10页 |
| 1.1.4 多不饱和脂肪酸概述及分类 | 第10-11页 |
| 1.1.5 n-3多不饱和脂肪酸 | 第11-21页 |
| 1.1.5.1 n-3多不饱和脂肪酸的生理功能 | 第12-14页 |
| 1.1.5.2 n-3多不饱和脂肪酸的合成 | 第14-18页 |
| 1.1.5.3 n-3多不饱和脂肪酸的生物资源 | 第18-20页 |
| 1.1.5.4 微生物合成n-3多不饱和脂肪酸 | 第20-21页 |
| 1.2 海洋真菌裂殖壶菌研究概况 | 第21-25页 |
| 1.2.1 裂殖壶菌简述 | 第21-22页 |
| 1.2.2 裂殖壶菌抗氧化保护研究 | 第22-23页 |
| 1.2.3 裂殖壶菌胞内脂肪酸的提取及微囊化研究 | 第23-24页 |
| 1.2.3.1 裂殖壶菌胞内脂肪酸的提取 | 第23页 |
| 1.2.3.2 油脂微囊化研究 | 第23-24页 |
| 1.2.4 裂殖壶菌安全性研究 | 第24-25页 |
| 1.2.5 裂殖壶菌饵料效果研究 | 第25页 |
| 1.3 植物激素研究概况 | 第25-37页 |
| 1.3.1 植物激素 | 第25-26页 |
| 1.3.2 植物激素的种类 | 第26页 |
| 1.3.3 植物激素作用机理 | 第26-27页 |
| 1.3.4 生长素 | 第27-29页 |
| 1.3.4.1 生长素简述 | 第27页 |
| 1.3.4.2 生长素的合成 | 第27-28页 |
| 1.3.4.3 生长素的作用机理 | 第28页 |
| 1.3.4.4 生长素的生理作用 | 第28-29页 |
| 1.3.4.5 生长素的应用 | 第29页 |
| 1.3.5 细胞分裂素 | 第29-32页 |
| 1.3.5.1 细胞分裂素简述 | 第29页 |
| 1.3.5.2 细胞分裂素的合成 | 第29-30页 |
| 1.3.5.3 细胞分裂素的作用机理 | 第30-31页 |
| 1.3.5.4 细胞分裂素的生理作用 | 第31页 |
| 1.3.5.5 细胞分裂素的应用 | 第31-32页 |
| 1.3.6 赤霉素 | 第32-33页 |
| 1.3.6.1 赤霉素简述 | 第32页 |
| 1.3.6.2 赤霉素的合成 | 第32页 |
| 1.3.6.3 赤霉素的作用机理 | 第32-33页 |
| 1.3.6.4 赤霉素的生理作用 | 第33页 |
| 1.3.6.5 赤霉素的应用 | 第33页 |
| 1.3.7 脱落酸 | 第33-35页 |
| 1.3.7.1 脱落酸简述 | 第33-34页 |
| 1.3.7.2 脱落酸的合成 | 第34页 |
| 1.3.7.3 脱落酸作用机理 | 第34-35页 |
| 1.3.7.4 脱落酸的生理作用 | 第35页 |
| 1.3.7.5 脱落酸的应用 | 第35页 |
| 1.3.8 乙烯 | 第35-37页 |
| 1.3.8.1 乙烯简述 | 第35-36页 |
| 1.3.8.2 乙烯的合成 | 第36页 |
| 1.3.8.3 乙烯的作用机理 | 第36页 |
| 1.3.8.4 乙烯的生理作用 | 第36-37页 |
| 1.3.8.5 乙烯的应用 | 第37页 |
| 1.4 脂肪酸提取研究概况 | 第37-41页 |
| 1.4.1 脂肪酸的提取方法 | 第38-39页 |
| 1.4.1.1 超声波协助萃取法 | 第38页 |
| 1.4.1.2 索氏提取法 | 第38页 |
| 1.4.1.3 微波协助萃取法 | 第38-39页 |
| 1.4.1.4 超临界流体萃取法 | 第39页 |
| 1.4.2 DHA提取 | 第39-40页 |
| 1.4.2.1 提取DHA的原料及选择 | 第39-40页 |
| 1.4.3 提取DHA的意义 | 第40-41页 |
| 第二章 植物激素对裂殖壶菌生长及脂肪酸组成的影响 | 第41-52页 |
| 2.1 材料与方法 | 第41-44页 |
| 2.1.1 材料 | 第41-42页 |
| 2.1.1.1 菌种 | 第41页 |
| 2.1.1.2 培养基 | 第41-42页 |
| 2.1.1.3 主要试剂 | 第42页 |
| 2.1.2 实验仪器 | 第42-43页 |
| 2.1.3 实验方法 | 第43页 |
| 2.1.3.1 培养方法 | 第43页 |
| 2.1.3.2 种子液的制备 | 第43页 |
| 2.1.3.3 生物量的测定 | 第43页 |
| 2.1.3.4 脂肪酸的甲酯化及气相色谱分析 | 第43页 |
| 2.1.4 6种植物激素对裂殖壶菌的生长和DHA含量的影响 | 第43-44页 |
| 2.1.4.1 6-苄基腺嘌呤(BA)对裂殖壶菌的生长和DHA含量的影响 | 第43页 |
| 2.1.4.2 糠基腺嘌呤(KT)对裂殖壶菌的生长和DHA含量的影响 | 第43-44页 |
| 2.1.4.3 赤霉素(GA)对裂殖壶菌的生长和DHA含量的影响 | 第44页 |
| 2.1.4.4 吲哚丁酸(IBA)对裂殖壶菌的生长和DHA含量的影响 | 第44页 |
| 2.1.4.5 a-萘乙酸(NAA)对裂殖壶菌的生长和DHA含量的影响 | 第44页 |
| 2.1.4.6 吲哚乙酸(IAA)对裂殖壶菌的生长和DHA含量的影响 | 第44页 |
| 2.2 结果与分析 | 第44-50页 |
| 2.2.1 6-苄基腺嘌呤(BA)对裂殖壶菌生长与DHA含量的影响 | 第44-45页 |
| 2.2.2 糠基腺嘌呤(KT)对裂殖壶菌生长与DHA含量的影响 | 第45-46页 |
| 2.2.3 赤霉素(GA)对裂殖壶菌生长与DHA含量的影响 | 第46-47页 |
| 2.2.4 吲哚丁酸(IBA)对裂殖壶菌生长与DHA含量的影响 | 第47-48页 |
| 2.2.5 α-萘乙酸(NAA)对裂殖壶菌生长与DHA含量的影响 | 第48-49页 |
| 2.2.6 吲哚乙酸(IAA)对裂殖壶菌生长与DHA含量的影响 | 第49-50页 |
| 2.3 讨论 | 第50-52页 |
| 第三章 裂殖壶菌中脂肪酸的提取方法研究 | 第52-64页 |
| 3.1 材料与方法 | 第53-56页 |
| 3.1.1 裂殖壶菌菌粉制备 | 第53-54页 |
| 3.1.1.1 菌种 | 第53页 |
| 3.1.1.2 培养基 | 第53页 |
| 3.1.1.3 培养方法 | 第53-54页 |
| 3.1.2 实验仪器 | 第54页 |
| 3.1.3 实验方法 | 第54-56页 |
| 3.1.3.1 超声波破壁正己烷提取法 | 第54页 |
| 3.1.3.2 超声波破壁氯仿甲醇提取法 | 第54-55页 |
| 3.1.3.3 酶破壁正己烷提取法 | 第55-56页 |
| 3.2 结果与分析 | 第56-63页 |
| 3.2.1 超声波破壁正己烷提取法 | 第56-58页 |
| 3.2.1.1 提取时间对提取率的影响 | 第56-57页 |
| 3.2.1.2 提取次数对提取率的影响 | 第57-58页 |
| 3.2.2 超声波破壁氯仿甲醇提取法: | 第58-60页 |
| 3.2.2.1 提取时间对提取率的影响 | 第58页 |
| 3.2.2.2 提取温度对提取率的影响 | 第58-60页 |
| 3.2.3 酶破壁正己烷提取法 | 第60-62页 |
| 3.2.3.1 溶菌酶破壁法对提取率的影响 | 第60-61页 |
| 3.2.3.2 蜗牛酶破壁法对提取率的影响 | 第61-62页 |
| 3.2.4 各种方法比较 | 第62-63页 |
| 3.3 讨论 | 第63-64页 |
| 结论 | 第64-65页 |
| 参考文献 | 第65-73页 |
| 致谢 | 第73-74页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第74-75页 |
