| 摘要 | 第3-6页 |
| ABSTRACT | 第6-9页 |
| 第一章 文章综述 | 第14-32页 |
| 1 食物过敏反应和作用机制 | 第14-26页 |
| 1.1 食物过敏和食物过敏原 | 第14-17页 |
| 1.1.1 食物过敏 | 第14-15页 |
| 1.1.2 食物过敏的流行病学 | 第15-16页 |
| 1.1.3 食物过敏原 | 第16-17页 |
| 1.2 食物过敏的作用机制 | 第17-22页 |
| 1.2.1 食物过敏的一般致敏机制 | 第18-19页 |
| 1.2.2 食物过敏的分子致敏机制以及免疫调控 | 第19-22页 |
| 1.3 动物模型 | 第22-24页 |
| 1.4 食物过敏原的检测技术 | 第24-26页 |
| 1.4.1 体内检测技术 | 第24页 |
| 1.4.2 体外检测技术 | 第24-25页 |
| 1.4.3 食物过敏原检测技术的发展前景 | 第25-26页 |
| 2 甲壳类水产过敏原的种类及其研究进展 | 第26-30页 |
| 2.1 甲壳类过敏原的种类 | 第26-29页 |
| 2.1.1 原肌球蛋白(TM) | 第27页 |
| 2.1.2 精氨酸激酶(AK) | 第27页 |
| 2.1.3 肌球蛋白轻链(MLC) | 第27-28页 |
| 2.1.4 肌钙结合蛋白(SCP) | 第28页 |
| 2.1.5 血蓝蛋白亚基(HCS) | 第28-29页 |
| 2.1.6 磷酸丙糖异构酶蛋白(TPI) | 第29页 |
| 2.2 国外研究进展 | 第29-30页 |
| 2.3 国内研究进展 | 第30页 |
| 3 本研究的目的、内容和意义 | 第30-32页 |
| 3.1 研究的目的及意义 | 第30-31页 |
| 3.2 研究的技术路线 | 第31-32页 |
| 第二章 中国对虾蛋白制备以及对ICR小鼠过敏模型的建立 | 第32-44页 |
| 1 前言 | 第32页 |
| 2 实验材料与方法 | 第32-40页 |
| 2.1 实验对象 | 第32-33页 |
| 2.2 主要试剂 | 第33页 |
| 2.3 主要仪器设备 | 第33-34页 |
| 2.4 实验方法 | 第34-40页 |
| 2.4.1 虾蛋白浸液的制备 | 第34-36页 |
| 2.4.1.1 蛋白质提取 | 第34页 |
| 2.4.1.2 蛋白含量测定 | 第34-36页 |
| 2.4.2 蛋白SDS-PAGE电泳 | 第36-38页 |
| 2.4.2.1 相关溶液配置 | 第36-37页 |
| 2.4.2.2 SDS-PAGE凝胶配制 | 第37页 |
| 2.4.2.3 SDS-PAGE蛋白样品的制备 | 第37页 |
| 2.4.2.4 SDS-PAGE电泳步骤 | 第37页 |
| 2.4.2.5 染色、脱色 | 第37-38页 |
| 2.4.2.6 图像的扫描与分析 | 第38页 |
| 2.4.3 虾蛋白ICR小鼠过敏模型的建立 | 第38-40页 |
| 2.4.3.1 ICR小鼠分组及喂养 | 第38页 |
| 2.4.3.2 免疫方案 | 第38页 |
| 2.4.3.3 小鼠血清中特异性IgE的测定 | 第38-40页 |
| 3 结果与分析 | 第40-42页 |
| 3.1 蛋白的SDS-PAGE分析 | 第40页 |
| 3.2 小鼠血清中特异性sIgE的检测结果 | 第40-42页 |
| 4 讨论 | 第42-43页 |
| 5 本章小结 | 第43-44页 |
| 第三章 中国对虾蛋白诱导ICR小鼠肠道黏膜过敏反应的机制研究 | 第44-55页 |
| 1 前言 | 第44-45页 |
| 2 实验材料与方法 | 第45-48页 |
| 2.1 实验对象 | 第45页 |
| 2.2 主要试剂 | 第45页 |
| 2.3 主要仪器设备 | 第45-46页 |
| 2.4 实验方法 | 第46-48页 |
| 2.4.1 取材及标本处理 | 第46页 |
| 2.4.2 小鼠肠道形态学观察 | 第46-47页 |
| 2.4.3 小肠肥大细胞完整率 | 第47页 |
| 2.4.4 小鼠小肠绒毛相关T细胞和固有层浆细胞检测 | 第47-48页 |
| 3 结果与分析 | 第48-52页 |
| 3.1 小鼠肠道的形态学观察 | 第48-49页 |
| 3.2 小肠肥大细胞形态学观察以及完整率 | 第49-50页 |
| 3.3 小鼠小肠绒毛相关T细胞及固有层IgA~+浆细胞检测 | 第50-52页 |
| 3.3.1 小肠绒毛T细胞及固有层浆细胞观察 | 第50-52页 |
| 3.3.2 阳性T细胞及IgA~+浆细胞计数和统计学处理 | 第52页 |
| 4 讨论 | 第52-54页 |
| 5 本章小结 | 第54-55页 |
| 第四章 中国对虾蛋白引发ICR小鼠体内脏器比重和相关酶的变化 | 第55-72页 |
| 1 前言 | 第55-56页 |
| 2 实验材料与方法 | 第56-61页 |
| 2.1 实验对象 | 第56页 |
| 2.2 主要试剂 | 第56页 |
| 2.3 主要仪器设备 | 第56-57页 |
| 2.4 实验方法 | 第57-61页 |
| 2.4.1 取材及样本处理 | 第57页 |
| 2.4.2 小鼠体内不同脏器比重的测定 | 第57页 |
| 2.4.3 小鼠体内不同组织及血清中相关抗氧化酶的测定 | 第57-58页 |
| 2.4.3.1 组织和血清中SOD、POD、CAT的活性测定 | 第57-58页 |
| 2.4.3.2 组织和血清中GSH-Px、GST的活性测定 | 第58页 |
| 2.4.4 小鼠体内不同组织及血清中过敏特征酶的测定 | 第58-61页 |
| 2.4.4.1 组织和血清中NOS/iNOS的活性测定 | 第58页 |
| 2.4.4.2 组织和血清中PLA_2的浓度测定 | 第58-59页 |
| 2.4.4.3 组织中Ca~(2+)-ATPase相对表达量测定 | 第59-61页 |
| 3 结果与分析 | 第61-69页 |
| 3.1 小鼠体内不同组织的脏器指数比较 | 第61-62页 |
| 3.2 小鼠体内不同组织及血清中相关抗氧化酶的活性变化 | 第62-65页 |
| 3.2.1 组织和血清中SOD、POD、CAT的活性变化 | 第62-64页 |
| 3.2.2 组织和血清中GSH-Px、GST的活性变化 | 第64-65页 |
| 3.3 小鼠体内不同组织和血清中过敏特征酶变化 | 第65-69页 |
| 3.3.1 组织和血清中NOS/iNOS的活性变化 | 第65-66页 |
| 3.3.2 组织和血清中PLA_2的浓度变化 | 第66-67页 |
| 3.3.3 组织中Ca~(2+)-ATPase相对表达量变化 | 第67-69页 |
| 4 讨论 | 第69-70页 |
| 5 本章小结 | 第70-72页 |
| 第五章 总结论、创新点及研究展望 | 第72-75页 |
| 1 总结论 | 第72-73页 |
| 2 创新点 | 第73页 |
| 3 研究展望 | 第73-75页 |
| 参考文献 | 第75-83页 |
| 附录 缩略词中英文对照表 | 第83-85页 |
| 硕士期间完成的论文 | 第85-86页 |
| 致谢 | 第86-87页 |
