| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 缩略语/符号说明 | 第12-15页 |
| 前言 | 第15-18页 |
| 研究现状、成果 | 第15-17页 |
| 研究目的、方法 | 第17-18页 |
| 一、IVSE对脂多糖诱导RAW264.7 细胞一氧化氮生成的抑制作用及其机制研究 | 第18-51页 |
| 1.1 实验材料 | 第18-22页 |
| 1.1.1 化合物IVSE | 第18页 |
| 1.1.2 细胞株 | 第18页 |
| 1.1.3 试剂和耗材 | 第18-20页 |
| 1.1.4 仪器和设备 | 第20-22页 |
| 1.2 实验方法 | 第22-34页 |
| 1.2.1 试剂配制 | 第22-26页 |
| 1.2.2 细胞培养 | 第26-27页 |
| 1.2.3 MTT法测定细胞毒性 | 第27-28页 |
| 1.2.4 Griess法测定NO生成量 | 第28-29页 |
| 1.2.5 BCA法测定蛋白浓度 | 第29-30页 |
| 1.2.6 蛋白质印迹法测定蛋白活性 | 第30-33页 |
| 1.2.7 明胶酶谱法测定MMP-9 活性 | 第33-34页 |
| 1.2.8 数据分析 | 第34页 |
| 1.3 实验结果 | 第34-45页 |
| 1.3.1 细胞毒实验 | 第34-35页 |
| 1.3.2 倍半萜内酯化合物对NO生成的抑制作用 | 第35页 |
| 1.3.3 IVSE对LPS诱导RAW264.7 细胞NO生成的抑制作用 | 第35-37页 |
| 1.3.4 IVSE对LPS诱导RAW264.7 细胞NF-κB信号通路的影响 | 第37-41页 |
| 1.3.5 IVSE对LPS诱导的RAW264.7 细胞MAPKs信号通路的影响 | 第41-44页 |
| 1.3.6 IVSE对MMP-9 活性的影响 | 第44-45页 |
| 1.4 讨论 | 第45-50页 |
| 1.4.1 在RAW264.7 细胞中IVSE抑制LPS-诱导的NO生成及iNOS的表达 | 第45页 |
| 1.4.2 IVSE抑制LPS-诱导的NF-κB激活和MAPKs的磷酸化 | 第45-49页 |
| 1.4.3 IVSE抑制MMP-9 的活性 | 第49-50页 |
| 1.5 小结 | 第50-51页 |
| 二、ABLOO抑制肥大细胞白三烯合成和脱颗粒的作用及机制研究 | 第51-72页 |
| 2.1 实验材料 | 第51-55页 |
| 2.1.1 化合物ABLOO | 第51页 |
| 2.1.2 骨髓来源的肥大细胞（BMMCs） | 第51页 |
| 2.1.3 实验动物 | 第51页 |
| 2.1.4 试剂和耗材 | 第51-53页 |
| 2.1.5 仪器和设备 | 第53-55页 |
| 2.2 实验方法 | 第55-61页 |
| 2.2.1 试剂配制 | 第55-56页 |
| 2.2.2 细胞培养 | 第56-57页 |
| 2.2.3 MTT法测定细胞毒性 | 第57页 |
| 2.2.4 酶联免疫吸附实验 | 第57-59页 |
| 2.2.5 肥大细胞脱颗粒实验 | 第59-60页 |
| 2.2.6 蛋白质印迹法测定蛋白活性 | 第60-61页 |
| 2.2.7 数据分析 | 第61页 |
| 2.3 实验结果 | 第61-66页 |
| 2.3.1 MTT法考察ABLOO对BMMC细胞的非细胞毒浓度范围 | 第61页 |
| 2.3.2 ABLOO对IgE/DNP-HSA诱导BMMC细胞LTC_4生成的抑制作用及机制研究 | 第61-64页 |
| 2.3.3 ABLOO对IgE/DNP-HSA诱导的BMMC细胞脱颗粒抑制作用及机制研究 | 第64-66页 |
| 2.4 讨论 | 第66-71页 |
| 2.4.1 ABLOO抑制激活的BMMCs产生LTC_4和脱颗粒作用 | 第66-67页 |
| 2.4.2 ABLOO抑制cPLA_2和PLCγ的磷酸化 | 第67-70页 |
| 2.4.3 ABLOO与治疗哮喘药物 | 第70-71页 |
| 2.5 小结 | 第71-72页 |
| 三、ABLOO对IL-4 诱导A549细胞eotaxin-1 和ALOX15表达的抑制作用及其机制研究 | 第72-94页 |
| 3.1 实验材料 | 第72-75页 |
| 3.1.1 化合物ABLOO | 第72页 |
| 3.1.2 细胞株 | 第72页 |
| 3.1.3 试剂和耗材 | 第72-74页 |
| 3.1.4 仪器和设备 | 第74-75页 |
| 3.2 实验方法 | 第75-84页 |
| 3.2.1 试剂配制 | 第75-76页 |
| 3.2.2 细胞培养 | 第76-77页 |
| 3.2.3 MTT法测定细胞毒性 | 第77-78页 |
| 3.2.4 实时荧光定量PCR | 第78-80页 |
| 3.2.5 蛋白质印迹法测定蛋白活性 | 第80-81页 |
| 3.2.6 荧光素酶报告基因实验 | 第81-84页 |
| 3.2.7 数据分析 | 第84页 |
| 3.3 实验结果 | 第84-90页 |
| 3.3.1 细胞毒实验 | 第84-85页 |
| 3.3.2 ABLOO对IL-4 诱导A549细胞eotaxin-1 和ALOX15 mRNA表达的影响 | 第85-87页 |
| 3.3.3 ABLOO对IL-4 诱导的A549细胞JAK-STAT6信号通路的影响 | 第87-88页 |
| 3.3.4 ABLOO对IL-4 诱导的A549细胞STAT6转录活性的影响 | 第88-89页 |
| 3.3.5 ABLOO对Akt磷酸化水平的影响 | 第89-90页 |
| 3.4 讨论 | 第90-93页 |
| 3.4.1 ABLOO在A549细胞中抑制IL-4 诱导的eotaxin-1 和ALOX15mRNA的表达 | 第90-91页 |
| 3.4.2 ABLOO抑制IL-4 诱导的STAT6的磷酸化及转录活性 | 第91页 |
| 3.4.3 ABLOO抑制IL-4 诱导的JAK3的磷酸化作用 | 第91-92页 |
| 3.4.4 ABLOO上调IL-4 诱导的Akt磷酸化作用 | 第92-93页 |
| 3.5 小结 | 第93-94页 |
| 全文结论 | 第94-95页 |
| 论文创新点 | 第95-96页 |
| 参考文献 | 第96-106页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第106-108页 |
| 综述 抗哮喘药物及其活性评价模型研究进展 | 第108-131页 |
| 综述参考文献 | 第123-131页 |
| 致谢 | 第131-133页 |
| 个人简历 | 第133页 |
