| 摘要 | 第1-9页 |
| Abstract | 第9-14页 |
| 英文缩略语表 | 第14-26页 |
| 第一章 文献综述 | 第26-63页 |
| 1 生物活性肽的研究进展 | 第26-33页 |
| ·生物活性肽的概述 | 第26页 |
| ·生物活性肽的分类 | 第26页 |
| ·生物活性肽的功能 | 第26-30页 |
| ·生物活性肽的来源与制备方法 | 第30-33页 |
| 2 免疫活性肽的研究现状 | 第33-36页 |
| ·免疫活性肽概述 | 第33-34页 |
| ·免疫活性肽的来源及研究进展 | 第34-35页 |
| ·免疫肽的研究前景 | 第35-36页 |
| 3 可控酶解蛋白质的研究进展 | 第36-39页 |
| ·酶促动力学模型的研究进展 | 第37页 |
| ·蛋白质酶解工艺的研究进展 | 第37-38页 |
| ·可控酶解的研究前景 | 第38-39页 |
| 4 生物活性肽的分离鉴定研究进展 | 第39-43页 |
| ·生物活性肽的分离纯化 | 第39-42页 |
| ·生物活性肽的鉴定方法 | 第42-43页 |
| 5 生物传感器 | 第43-49页 |
| ·生物传感器概述 | 第43-45页 |
| ·酶生物传感器 | 第45-47页 |
| ·生物传感器在食品与发酵工业的应用 | 第47-49页 |
| ·生物传感器在生物活性肽生产中的前景 | 第49页 |
| 6 人工神经网络概述 | 第49-52页 |
| ·人工神经网络 | 第49-51页 |
| ·BP 神经网络 | 第51-52页 |
| 7 本课题研究的目的意义和主要内容 | 第52-54页 |
| ·本课题研究的立项背景和意义 | 第52-53页 |
| ·本文研究的主要内容 | 第53-54页 |
| 参考文献 | 第54-63页 |
| 第二章 鳕鱼骨架基本组成研究 | 第63-76页 |
| 引言 | 第63页 |
| 1 材料与仪器 | 第63-64页 |
| ·实验材料 | 第63页 |
| ·实验仪器 | 第63-64页 |
| 2 实验方法 | 第64-67页 |
| ·鳕鱼排基本成分的测定 | 第64-65页 |
| ·鳕鱼排与鳕鱼肌肉分离蛋白组成的测定 | 第65-66页 |
| ·氨基酸组成的测定 | 第66页 |
| ·脂肪酸组成的测定 | 第66页 |
| ·矿物质元素组成分析 | 第66-67页 |
| ·鳕鱼排软化研究 | 第67页 |
| 3 结果与分析 | 第67-73页 |
| ·基本成分分析 | 第67-68页 |
| ·分离蛋白组成分析 | 第68-69页 |
| ·氨基酸组成分析 | 第69-70页 |
| ·APF 的脂肪酸组成 | 第70-72页 |
| ·APF 的矿质元素组成 | 第72页 |
| ·APF 的高压预处理 | 第72-73页 |
| 4 本章小结 | 第73页 |
| 参考文献 | 第73-76页 |
| 第三章 鳕鱼蛋白酶解反应中响应因子的研究 | 第76-96页 |
| 引言 | 第76-77页 |
| 1 材料与方法 | 第77-78页 |
| ·实验材料 | 第77页 |
| ·实验仪器 | 第77页 |
| ·实验试剂 | 第77-78页 |
| 2 实验方法 | 第78-82页 |
| ·蛋白酶活力的测定 | 第78-79页 |
| ·底物鳕鱼排制备流程 | 第79页 |
| ·鳕鱼排酶解工艺流程 | 第79页 |
| ·水解度的测定 | 第79-81页 |
| ·氮回收率的测定 | 第81页 |
| ·水解产物分子量的测定 | 第81页 |
| ·氨基酸态氮的测定 | 第81页 |
| ·Glu 和Lys 含量的测定 | 第81-82页 |
| ·数据分析 | 第82页 |
| 3 结果与分析 | 第82-94页 |
| ·酶的反应参数 | 第82-83页 |
| ·不同蛋白酶水解效率比较 | 第83-85页 |
| ·不同蛋白酶对APF 蛋白水解物中氨基氮的影响 | 第85-86页 |
| ·APF 蛋白的游离氨基酸含量及变化 | 第86-88页 |
| ·酶切位点对生物传感器响应因子的影响 | 第88-92页 |
| ·酶切位点对响应因子的回归的影响 | 第92-94页 |
| 4 小结 | 第94页 |
| 参考文献 | 第94-96页 |
| 第四章 鳕鱼免疫活性肽的制备及性质研究 | 第96-129页 |
| 引言 | 第96-97页 |
| 第一节 鳕鱼水解物免疫活性的比较及体外免疫方法的确立 | 第97-107页 |
| 1 材料与仪器 | 第97页 |
| ·材料 | 第97页 |
| ·仪器 | 第97页 |
| ·试剂 | 第97页 |
| 2 方法 | 第97-100页 |
| ·试剂的配制 | 第97-98页 |
| ·样品制备 | 第98页 |
| ·脾淋巴细胞增殖实验 | 第98-99页 |
| ·ConA 诱导T 细胞增殖实验 | 第99页 |
| ·巨噬细胞吞噬中性红能力测定 | 第99页 |
| ·数据处理 | 第99-100页 |
| 3 结果与讨论 | 第100-106页 |
| ·脾淋巴细胞增殖 | 第100-101页 |
| ·水解物对ConA 诱导的T 细胞增殖的影响 | 第101-102页 |
| ·水解物对巨噬细胞增殖的影响 | 第102-103页 |
| ·不同酶的酶解效率比较 | 第103-104页 |
| ·影响APF 胰酶水解物免疫活性的因素 | 第104-106页 |
| 4 小结 | 第106-107页 |
| 第二节 鳕鱼免疫活性肽的工艺优化 | 第107-113页 |
| 1 材料与仪器 | 第107页 |
| ·材料 | 第107页 |
| ·仪器 | 第107页 |
| ·试剂 | 第107页 |
| 2 方法 | 第107-108页 |
| ·试剂的配制 | 第107页 |
| ·样品制备 | 第107-108页 |
| ·水解度的测定 | 第108页 |
| ·脾细胞增殖活性测定 | 第108页 |
| 3 结果与分析 | 第108-112页 |
| ·鳕鱼排免疫活性肽工艺优化 | 第108-112页 |
| ·鳕鱼排免疫活性肽的验证试验 | 第112页 |
| 4 小结 | 第112-113页 |
| 第三节 鳕鱼排免疫活性肽的理化性质研究 | 第113-126页 |
| 1 材料与仪器 | 第113页 |
| ·材料 | 第113页 |
| ·仪器 | 第113页 |
| 2 实验方法 | 第113-116页 |
| ·PFH 的紫外光谱 | 第113页 |
| ·PFH 氨基酸组成分析 | 第113页 |
| ·PFH 的功能性质 | 第113-115页 |
| ·PFH 的稳定性测定 | 第115-116页 |
| ·HPLC 分析 | 第116页 |
| 3 结果与分析 | 第116-126页 |
| ·PFH 的紫外图谱 | 第116-117页 |
| ·PFH 的氨基酸组成分析 | 第117-118页 |
| ·PFH 的功能性质分析 | 第118-123页 |
| ·PFH 的稳定性 | 第123-126页 |
| 4 小结 | 第126页 |
| 参考文献 | 第126-129页 |
| 第五章 基于生物传感器的鳕鱼免疫肽过程控制研究 | 第129-169页 |
| 引言 | 第129-130页 |
| 第一节 鳕鱼免疫肽动力学预测模型 | 第130-139页 |
| 1 材料与仪器 | 第130页 |
| ·材料 | 第130页 |
| ·仪器 | 第130页 |
| 2 实验方法 | 第130页 |
| ·酶活的测定 | 第130页 |
| ·水解度的测定 | 第130页 |
| 3 结果与分析 | 第130-137页 |
| ·胰蛋白酶水解鳕鱼蛋白的动力学机制 | 第130-131页 |
| ·胰蛋白酶水解鳕鱼蛋白的酶解曲线 | 第131-133页 |
| ·胰蛋白酶水解鳕鱼蛋白动力学模型参数的确定 | 第133-134页 |
| ·胰蛋白酶失活常数的确定 | 第134-135页 |
| ·胰蛋白酶水解鳕鱼蛋白动力学模型的验证 | 第135-137页 |
| 4 小结 | 第137-139页 |
| 第二节 鳕鱼免疫肽酶解的数学监控模型 | 第139-147页 |
| 1 材料与仪器 | 第139页 |
| ·材料 | 第139页 |
| ·仪器 | 第139页 |
| 2 实验方法 | 第139页 |
| ·酶活的测定 | 第139页 |
| ·水解度的测定 | 第139页 |
| ·Glu 和Lys 含量的测定 | 第139页 |
| 3 结果与分析 | 第139-146页 |
| ·恒定条件下鳕鱼免疫肽的监控数学模型 | 第139-143页 |
| ·动态条件下鳕鱼免疫肽的监控关系 | 第143-146页 |
| 4 小结 | 第146-147页 |
| 第三节 基于人工神经网络的鳕鱼免疫肽动态监控模型 | 第147-167页 |
| 1 材料与仪器 | 第148页 |
| ·材料 | 第148页 |
| ·仪器 | 第148页 |
| 2 实验方法 | 第148页 |
| ·酶活的测定 | 第148页 |
| ·水解度的测定 | 第148页 |
| ·Glu 和Lys 含量的测定 | 第148页 |
| 3 结果与分析 | 第148-166页 |
| ·GLU-BP-ANNs 的动态监控模型 | 第148-156页 |
| ·LYS-BP-ANNs 的动态监控模型 | 第156-161页 |
| ·GLU-LYS-BP-ANNs 的监控模型 | 第161-166页 |
| 4 小结 | 第166-167页 |
| 参考文献 | 第167-169页 |
| 第六章 鳕鱼免疫活性肽的分离纯化及结构表征 | 第169-181页 |
| 引言 | 第169-170页 |
| 1 材料与仪器 | 第170页 |
| ·实验材料 | 第170页 |
| ·仪器 | 第170页 |
| 2 实验方法 | 第170-172页 |
| ·SP Sephadex C25 阳离子交换柱层析 | 第170页 |
| ·Sephadex G15 凝胶柱脱盐 | 第170页 |
| ·Sephadex G25 凝胶柱层析 | 第170-171页 |
| ·反相高效液相色谱C18 半制备柱纯化制备 | 第171页 |
| ·脾细胞增殖活性 | 第171页 |
| ·免疫活性肽的结构鉴定 | 第171-172页 |
| ·数据处理 | 第172页 |
| 3 结果与分析 | 第172-180页 |
| ·SP Sephadex C25 阳离子交换柱层析分离免疫肽 | 第172-173页 |
| ·Sephadex G25 凝胶柱层析分离C5 组分 | 第173-174页 |
| ·反相高效液相色谱对活性肽纯化 | 第174-180页 |
| 4 小结 | 第180页 |
| 参考文献 | 第180-181页 |
| 第七章 PFH 对小鼠体内免疫活性的影响 | 第181-199页 |
| 引言 | 第181-182页 |
| 第一节 PFH 对正常小鼠免疫活性的影响 | 第182-190页 |
| 1 实验材料与仪器 | 第182页 |
| ·实验材料 | 第182页 |
| ·仪器 | 第182页 |
| ·试剂 | 第182页 |
| 2 实验方法 | 第182-185页 |
| ·试剂的配制 | 第182-183页 |
| ·实验动物分组与喂养 | 第183页 |
| ·器官指数 | 第183页 |
| ·迟发型变态反应 | 第183-184页 |
| ·小鼠脾淋巴细胞转化实验 | 第184页 |
| ·血清溶血素的测定 | 第184-185页 |
| ·巨噬细胞吞噬鸡红细胞实验 | 第185页 |
| ·数据处理 | 第185页 |
| 3 结果与讨论 | 第185-189页 |
| ·PFH 对正常小鼠体重和脏器指数的影响 | 第185-187页 |
| ·PFH 对正常小鼠细胞免疫功能的影响 | 第187-188页 |
| ·PFH 对正常小鼠体液免疫功能的影响 | 第188页 |
| ·PFH 对正常小鼠单核巨噬细胞免疫功能的影响 | 第188-189页 |
| 4 小结 | 第189-190页 |
| 第二节 PFH 对免疫低下小鼠免疫活性的影响 | 第190-197页 |
| 1 材料与仪器 | 第190页 |
| ·实验材料 | 第190页 |
| ·仪器 | 第190页 |
| ·试剂 | 第190页 |
| 2 实验方法 | 第190-192页 |
| ·PFH 对免疫低下小鼠免疫功能的影响 | 第190-191页 |
| ·脏器指数 | 第191页 |
| ·血清溶血素的测定 | 第191页 |
| ·迟发型变态反应 | 第191页 |
| ·巨噬细胞吞噬鸡红细胞实验 | 第191页 |
| ·小鼠脾淋巴细胞转化实验 | 第191页 |
| ·小鼠碳廓清实验 | 第191-192页 |
| ·数据处理 | 第192页 |
| 3 结果与讨论 | 第192-196页 |
| ·PFH 对免疫低下小鼠脏器指数的影响 | 第192-193页 |
| ·PFH 对免疫低下小鼠细胞免疫功能的影响 | 第193-194页 |
| ·PFH 对免疫低下小鼠体液免疫功能的影响 | 第194-195页 |
| ·PFH 对免疫低下小鼠单核巨噬细胞免疫功能的影响 | 第195-196页 |
| 4 小结 | 第196-197页 |
| 参考文献 | 第197-199页 |
| 第八章 鳕鱼免疫活性肽的精制研究 | 第199-211页 |
| 引言 | 第199-200页 |
| 1 材料与仪器 | 第200-201页 |
| ·实验材料 | 第200页 |
| ·实验仪器 | 第200-201页 |
| 2 实验方法 | 第201-202页 |
| ·大孔吸附树脂预处理 | 第201页 |
| ·静态吸附实验 | 第201-202页 |
| ·静态解析实验 | 第202页 |
| ·动态吸附与解吸实验 | 第202页 |
| ·脱盐率的测定 | 第202页 |
| ·MTT 法测定脾淋巴细胞增殖 | 第202页 |
| 3 结果与分析 | 第202-208页 |
| ·大孔吸附树脂的筛选 | 第202-203页 |
| ·DA201-C 树脂的吸附动力学曲线 | 第203-204页 |
| ·pH 对DA201-C 树脂吸附的影响 | 第204页 |
| ·多肽浓度对DA201-C 树脂吸附的影响 | 第204-205页 |
| ·温度对DA201-C 树脂吸附的影响 | 第205页 |
| ·料液比对DA201-C 树脂吸附的影响 | 第205-206页 |
| ·DA201-C 树脂的静态解析 | 第206页 |
| ·DA201-C 树脂的动态吸附与解析 | 第206-207页 |
| ·DA201-C 树脂的吸附及脱盐分析 | 第207-208页 |
| ·脾细胞增殖实验 | 第208页 |
| 4 小结 | 第208-209页 |
| 参考文献 | 第209-211页 |
| 结论 | 第211-214页 |
| 本论文创新点 | 第214-215页 |
| 个人简历 | 第215页 |
| 博士期间发表的研究成果 | 第215-217页 |
| 致谢 | 第217页 |
