| 中文摘要 | 第11-13页 |
| ABSTRACT | 第13-14页 |
| 第一章 文献综述 | 第15-21页 |
| 1.1 课题的研究背景 | 第15-17页 |
| 1.1.1 二氧化硫的污染现状及其流行病学的研究 | 第15页 |
| 1.1.2 二氧化硫作用机体后可能的毒理学机制 | 第15-16页 |
| 1.1.3 二氧化硫对线粒体损伤的研究进展 | 第16-17页 |
| 1.1.4 线粒体氧化磷酸化过程可能的调控途径 | 第17页 |
| 1.2 课题的研究目的及意义 | 第17页 |
| 1.3 课题的研究内容及实验技术路线 | 第17-19页 |
| 1.3.1 课题的研究内容 | 第17-18页 |
| 1.3.2 实验技术路线 | 第18-19页 |
| 1.4 课题的创新之处 | 第19-21页 |
| 第二章 NaHSO_3对H9C2心肌细胞线粒体损伤的分子机制 | 第21-37页 |
| 2.1 实验试剂及仪器 | 第21-22页 |
| 2.1.1 主要试剂 | 第21-22页 |
| 2.1.2 主要仪器 | 第22页 |
| 2.2 细胞的培养及染毒 | 第22-23页 |
| 2.2.1 细胞的复苏 | 第22页 |
| 2.2.2 细胞的传代 | 第22页 |
| 2.2.3 细胞的染毒 | 第22-23页 |
| 2.3 实验方法及步骤 | 第23-29页 |
| 2.3.1 细胞存活和生长检测 | 第23页 |
| 2.3.2 心肌细胞线粒体的提取及相关指标的测定 | 第23-24页 |
| 2.3.3 心肌细胞线粒体ATP含量的测定 | 第24页 |
| 2.3.4 总DNA的提取 | 第24-25页 |
| 2.3.5 总RNA的提取、cDNA的合成及荧光定量PCR | 第25-28页 |
| 2.3.6 Western blot | 第28-29页 |
| 2.4 数据处理 | 第29页 |
| 2.5 结果与分析 | 第29-34页 |
| 2.5.1 不同浓度NaHSO_3对H9C2心肌细胞存活及生长情况的影响 | 第29-30页 |
| 2.5.2 不同浓度NaHSO_3对H9C2心肌细胞线粒体膜电位的影响 | 第30页 |
| 2.5.3 不同浓度NaHSO_3对H9C2心肌细胞细胞色素C氧化酶活性的影响 | 第30-31页 |
| 2.5.4 不同浓度NaHSO_3对H9C2心肌细胞线粒体ATP含量的影响 | 第31页 |
| 2.5.5 不同浓度NaHSO_3对H9C2心肌细胞线粒体DNA含量的影响 | 第31-32页 |
| 2.5.6 不同浓度NaHSO_3对H9C2心肌细胞氧化磷酸化过程中复合体Ⅳ、Ⅴ几种亚基mRNA表达水平的影响 | 第32-33页 |
| 2.5.7 不同浓度NaHSO_3对H9C2心肌细胞氧化磷酸化过程中调控基因mRNA表达水平的影响 | 第33页 |
| 2.5.8 不同浓度NaHSO_3对H9C2心肌细胞氧化磷酸化过程中调控基因蛋白表达水平的影响 | 第33-34页 |
| 2.6 讨论 | 第34-37页 |
| 第三章 SO_2吸入对大鼠心脏线粒体损伤的分子机制 | 第37-47页 |
| 3.1 实验试剂及仪器 | 第37页 |
| 3.2 实验动物处理 | 第37页 |
| 3.3 实验方法及步骤 | 第37-40页 |
| 3.3.1 线粒体超微结构检测 | 第37页 |
| 3.3.2 心脏线粒体的提取及相关指标的测定 | 第37-38页 |
| 3.3.3 心脏线粒体ATP含量的测定 | 第38-39页 |
| 3.3.4 总DNA的提取 | 第39页 |
| 3.3.5 总RNA的提取、cDNA的合成及荧光定量PCR | 第39页 |
| 3.3.6 Western blot | 第39-40页 |
| 3.4 数据处理 | 第40页 |
| 3.5 结果与分析 | 第40-44页 |
| 3.5.1 不同浓度SO_2对大鼠心脏线粒体超微结构的影响 | 第40页 |
| 3.5.2 不同浓度SO_2对大鼠心脏线粒体膜电位的影响 | 第40-41页 |
| 3.5.3 不同浓度SO_2对大鼠心脏细胞色素C氧化酶活性的影响 | 第41页 |
| 3.5.4 不同浓度SO_2对大鼠心脏线粒体ATP含量的影响 | 第41页 |
| 3.5.5 不同浓度SO_2对大鼠心脏线粒体DNA含量的影响 | 第41-42页 |
| 3.5.6 不同浓度SO_2对大鼠心脏线粒体氧化磷酸化过程中复合体Ⅳ、Ⅴ几种亚基mRNA表达水平的影响 | 第42-43页 |
| 3.5.7 不同浓度SO_2对大鼠心脏氧化磷酸化过程中调控基因mRNA表达水平的影响 | 第43页 |
| 3.5.8 不同浓度SO_2对大鼠心脏氧化磷酸化过程中调控基因蛋白表达水平的影响 | 第43-44页 |
| 3.6 讨论 | 第44-47页 |
| 第四章 SO_2吸入对大鼠脑线粒体损伤的分子机制 | 第47-55页 |
| 4.1 实验试剂及仪器 | 第47页 |
| 4.2 实验动物处理 | 第47页 |
| 4.3 实验方法及步骤 | 第47-48页 |
| 4.3.1 脑线粒体的提取及相关指标的测定 | 第47页 |
| 4.3.2 脑线粒体ATP含量的测定 | 第47页 |
| 4.3.3 总DNA的提取 | 第47-48页 |
| 4.3.4 总RNA的提取、cDNA的合成及荧光定量PCR | 第48页 |
| 4.3.5 Western blot | 第48页 |
| 4.4 数据处理 | 第48页 |
| 4.5 结果与分析 | 第48-53页 |
| 4.5.1 不同浓度SO_2对大鼠脑线粒体膜电位的影响 | 第48-49页 |
| 4.5.2 不同浓度SO_2对大鼠脑细胞色素C氧化酶活性的影响 | 第49页 |
| 4.5.3 不同浓度SO_2对大鼠脑线粒体ATP含量的影响 | 第49-50页 |
| 4.5.4 不同浓度SO_2对大鼠脑线粒体DNA含量的影响 | 第50页 |
| 4.5.5 不同浓度SO_2对大鼠脑线粒体氧化磷酸化过程中复合体Ⅳ、Ⅴ几种亚基mRNA表达水平的影响 | 第50-51页 |
| 4.5.6 不同浓度SO_2对大鼠脑线粒体氧化磷酸化过程中调控基因mRNA的表达水平的影响 | 第51-52页 |
| 4.5.7 不同浓度SO_2对大鼠脑线粒体氧化磷酸化过程中调控基因蛋白的表达水平的影响 | 第52-53页 |
| 4.6 讨论 | 第53-55页 |
| 参考文献 | 第55-61页 |
| 攻读学位期间取得的研究成果 | 第61-62页 |
| 致谢 | 第62-63页 |
| 个人简况及联系方式 | 第63-64页 |
| 承诺书 | 第64-65页 |
