| 缩略词 | 第6-7页 |
| 前言 | 第7-8页 |
| 中文摘要 | 第8-10页 |
| Abstract | 第10-11页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-22页 |
| 1.1 肠道病毒71型概述 | 第12-18页 |
| 1.1.1 手足口病简介 | 第12页 |
| 1.1.2 临床流行病学 | 第12-13页 |
| 1.1.3 EV71病毒结构 | 第13-14页 |
| 1.1.4 EV71的特异性受体 | 第14-15页 |
| 1.1.5 EV71感染的动物模型 | 第15-16页 |
| 1.1.6 EV71的疫苗研发 | 第16-18页 |
| 1.2 miRNA概述 | 第18-22页 |
| 1.2.1 miRNA的发现 | 第18-19页 |
| 1.2.2 成熟miRNA的生物合成和作用机理 | 第19-20页 |
| 1.2.3 miRNA与病毒的相互作用 | 第20页 |
| 1.2.4 miRNA调节EV71的感染和复制 | 第20-22页 |
| 第二章 miR-127-5p抑制EV71感染的研究 | 第22-51页 |
| 2.1 实验材料 | 第22-24页 |
| 2.1.1 细胞系和病毒株 | 第22页 |
| 2.1.2 主要仪器和设备 | 第22页 |
| 2.1.3 实验试剂 | 第22-23页 |
| 2.1.4 主要试剂配制 | 第23-24页 |
| 2.2 实验方法 | 第24-31页 |
| 2.2.1 细胞培养 | 第24页 |
| 2.2.2 病毒培养 | 第24页 |
| 2.2.3 miRNA的转染 | 第24-25页 |
| 2.2.4 RNA提取 | 第25页 |
| 2.2.5 Real-time PCR | 第25-27页 |
| 2.2.6 Western Blot | 第27-28页 |
| 2.2.7 EV71滴度测定 | 第28页 |
| 2.2.8 质粒的构建 | 第28-29页 |
| 2.2.9 质粒转染和Luciferase检测 | 第29-30页 |
| 2.2.10 免疫荧光 | 第30页 |
| 2.2.11 流式细胞术 | 第30-31页 |
| 2.2.12 统计分析 | 第31页 |
| 2.3 实验结果 | 第31-49页 |
| 2.3.1 miR-127-5p通过靶向SCARB2的3'UTR而抑制其表达 | 第31-36页 |
| 2.3.2 EV71感染引起miR-127-5p水平上升 | 第36-38页 |
| 2.3.3 过表达miR-127-5p会抑制EV71基因表达和病毒感染 | 第38-42页 |
| 2.3.4 抑制内源性miR-127-5p的表达会促进病毒感染 | 第42-46页 |
| 2.3.5 miR-127-5p不会影响胞内病毒的复制 | 第46-49页 |
| 2.4 讨论 | 第49-51页 |
| 参考文献 | 第51-57页 |
| 硕士在读期间科研成果 | 第57-58页 |
| 致谢 | 第58-59页 |
