羊栖菜多糖的化学修饰及生物活性研究
| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-7页 |
| 第1章 引言 | 第11-25页 |
| 1.1 多糖的研究进展 | 第11-16页 |
| 1.1.1 多糖的提取方法 | 第11-12页 |
| 1.1.2 多糖的降解方法 | 第12-14页 |
| 1.1.3 多糖的分子修饰 | 第14-16页 |
| 1.2 酪氨酸酶的研究概况 | 第16-19页 |
| 1.2.1 酪氨酸酶抑制剂的抑制机理 | 第17页 |
| 1.2.2 酪氨酸酶抑制剂的分类 | 第17-19页 |
| 1.3 羊栖菜及羊栖菜多糖的研究进展 | 第19-22页 |
| 1.3.1 羊栖菜 | 第19页 |
| 1.3.2 羊栖菜多糖的化学研究 | 第19-20页 |
| 1.3.3 羊栖菜多糖的活性研究 | 第20-22页 |
| 1.4 本课题研究背景及意义 | 第22-24页 |
| 1.5 本课题研究内容 | 第24-25页 |
| 第2章 羊栖菜多糖的制备及多糖降解的优化 | 第25-35页 |
| 2.1 实验材料与设备 | 第25-26页 |
| 2.1.1 实验材料与试剂 | 第25页 |
| 2.1.2 实验设备 | 第25-26页 |
| 2.2 实验方法 | 第26-29页 |
| 2.2.1 羊栖菜多糖的提取及制备 | 第26-27页 |
| 2.2.2 降解多糖的制备 | 第27页 |
| 2.2.3 降解的单因素试验 | 第27-28页 |
| 2.2.4 降解条件优化 | 第28-29页 |
| 2.3 结果分析 | 第29-34页 |
| 2.3.1 单因素结果分析 | 第29-30页 |
| 2.3.2 响应面优化实验 | 第30-34页 |
| 2.4 本章小结 | 第34-35页 |
| 第3章 羊栖菜多糖组分分析及修饰 | 第35-55页 |
| 3.1 实验材料与设备 | 第35-36页 |
| 3.1.1 实验材料与试剂 | 第35-36页 |
| 3.1.2 实验设备 | 第36页 |
| 3.2 试验方法 | 第36-41页 |
| 3.2.1 羊栖菜多糖的理化性质 | 第37-39页 |
| 3.2.2 HPGPC测定多糖分子量 | 第39-40页 |
| 3.2.3 GC-MS测定单糖组成 | 第40-41页 |
| 3.2.4 水分的测定 | 第41页 |
| 3.2.5 红外光谱分析 | 第41页 |
| 3.2.6 核磁分析 | 第41页 |
| 3.3 多糖的修饰 | 第41-44页 |
| 3.3.1 多糖的羧甲基化修饰 | 第42-43页 |
| 3.3.2 多糖的异羟肟酸衍生物制备 | 第43-44页 |
| 3.4 结果与分析 | 第44-54页 |
| 3.4.1 物理性质分析 | 第44页 |
| 3.4.2 化学组分分析 | 第44-46页 |
| 3.4.3 分子量测定结果 | 第46-47页 |
| 3.4.4 单糖组成测定结果 | 第47-49页 |
| 3.4.5 羧甲基取代度的测定 | 第49页 |
| 3.4.6 异羟肟酸衍生物铁螯合能力的测定 | 第49-51页 |
| 3.4.7 红外光谱分析 | 第51-52页 |
| 3.4.8 ~1H NMR分析 | 第52-53页 |
| 3.4.9 ~(13)C NMR分析 | 第53-54页 |
| 3.5 本章小结 | 第54-55页 |
| 第4章 羊栖菜多糖及其衍生物活性的研究 | 第55-75页 |
| 4.1 实验材料及设备 | 第55-57页 |
| 4.1.1 实验材料与试剂 | 第55-56页 |
| 4.1.2 实验设备 | 第56页 |
| 4.1.3 供试菌种 | 第56-57页 |
| 4.2 试验方法 | 第57-60页 |
| 4.2.1 羊栖菜多糖体外抗氧化实验 | 第57-58页 |
| 4.2.2 酪氨酸酶抑制活性 | 第58页 |
| 4.2.3 抑菌实验方法 | 第58-60页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第60-73页 |
| 4.3.1 抗氧化性 | 第60-64页 |
| 4.3.2 抑制酪氨酸酶活性 | 第64-67页 |
| 4.3.3 抑菌试验结果 | 第67-73页 |
| 4.4 本章小结 | 第73-75页 |
| 第5章 结论、创新点与展望 | 第75-78页 |
| 5.1 结论 | 第75-76页 |
| 5.2 创新点 | 第76页 |
| 5.3 展望 | 第76-78页 |
| 参考文献 | 第78-88页 |
| 附录一 缩略语表 | 第88-89页 |
| 致谢 | 第89-90页 |
