| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-10页 |
| 第一章 文献综述 | 第10-21页 |
| ·分子生物学方法在水产养殖动物病原检测中的应用 | 第10-18页 |
| ·等温扩增技术 | 第10-15页 |
| ·聚合酶链反应技术（Polymerase chain reaction, PCR） | 第15-18页 |
| ·限制性酶切技术 | 第18页 |
| ·几种水产养殖动物病原概述 | 第18-21页 |
| ·对虾白斑综合征病毒（WSSV） | 第18-19页 |
| ·黄头病毒（YHV） | 第19-21页 |
| 第二章 对虾白斑综合征病毒交叉引物等温扩增检测方法的建立及应用 | 第21-32页 |
| ·实验材料与方法 | 第21-25页 |
| ·病料来源 | 第21页 |
| ·DNA 模板的提取及 WSSV 阳性模板的确定 | 第21-22页 |
| ·WSSV-CPA 引物设计 | 第22-23页 |
| ·WSSV-CPA 反应条件 | 第23页 |
| ·WSSV-CPA 反应体系及反应条件的优化 | 第23页 |
| ·WSSV-CPA 的特异性 | 第23页 |
| ·WSSV-CPA 产物酶切鉴定 | 第23-24页 |
| ·WSSV 的 CPA 与套式 PCR 检测方法的灵敏度比较 | 第24页 |
| ·WSSV 的 CPA 与 TagMan 探针法 qPC 方法的灵敏度比较 | 第24页 |
| ·WSSV 的 CPA 与 LAMP 方法的灵敏度比较 | 第24页 |
| ·WSSV qCPA 检测方法的建立 | 第24-25页 |
| ·利用 WSSV-CPA 进行实际样品检测 | 第25页 |
| ·实验结果 | 第25-30页 |
| ·WSSV-CPA 反应的优化结果 | 第25-26页 |
| ·WSSV-CPA 方法的特异性结果 | 第26页 |
| ·WSSV-CPA 产物的酶切鉴定结果 | 第26-27页 |
| ·WSSV-CPA 与 WSSV 套式 PCR 检测方法的灵敏度比较结果 | 第27页 |
| ·WSSV-CPA 与 WSSV-qPCR 检测方法的灵敏度比较结果 | 第27-28页 |
| ·WSSV-CPA 与 WSSV-LAMP 检测方法的灵敏度比较结果 | 第28页 |
| ·WSSV qCPA 检测方法的建立 | 第28-29页 |
| ·利用 WSSV-CPA 检测对虾组织样品结果 | 第29-30页 |
| ·讨论 | 第30-32页 |
| 第三章 黄头病毒中国株 rRT-LAMP 检测方法的建立 | 第32-46页 |
| ·实验材料与方法 | 第32-38页 |
| ·病料来源 | 第32-33页 |
| ·RNA 模板的提取 | 第33页 |
| ·引物设计 | 第33-34页 |
| ·rRT- LAMP 反应条件 | 第34页 |
| ·rRT- LAMP 反应体系和反应条件的优化 | 第34-35页 |
| ·rRT- LAMP 产物酶切鉴定 | 第35页 |
| ·RNA 标准品的制备及标准曲线的建立 | 第35-37页 |
| ·rRT-LAMP 灵敏度分析及与 rRT-PCR 的比较 | 第37页 |
| ·rRT-LAMP 灵敏度分析及与 RT-LAMP 试剂盒的比较 | 第37-38页 |
| ·rRT-LAMP 的特异性检验 | 第38页 |
| ·rRT-LAMP 实际样品检测 | 第38页 |
| ·实验结果 | 第38-43页 |
| ·rRT-LAMP 反应体系的优化结果 | 第38-40页 |
| ·rRT-LAMP 产物的酶切鉴定结果 | 第40-41页 |
| ·标准曲线的建立 | 第41页 |
| ·YHV rRT-LAMP灵敏度检测分析及与rRT-PCR的比较结果 | 第41-42页 |
| ·rRT-LAMP灵敏度分析及与RT-LAMP试剂盒的比较 | 第42-43页 |
| ·特异性检测结果 | 第43页 |
| ·实际样品检测结果 | 第43页 |
| ·讨论 | 第43-46页 |
| 第四章 对虾白斑综合征病毒与黄头病毒中国株的分子流行病学分析 | 第46-50页 |
| ·材料与方法 | 第46页 |
| ·对虾样品的来源 | 第46页 |
| ·样品处理 | 第46页 |
| ·WSSV 和 YHV 流行病学初步分析 | 第46-48页 |
| ·对虾种类与病毒阳性比率 | 第47页 |
| ·地理位置与病毒阳性比率 | 第47-48页 |
| ·两种病毒阳性检出比率 | 第48页 |
| ·讨论 | 第48-50页 |
| 参考文献 | 第50-56页 |
| 致谢 | 第56页 |
