摘要 | 第4-5页 |
ABSTRACT | 第5页 |
第一章 引言 | 第8-17页 |
1.1 研究背景 | 第8页 |
1.2 塞来昔布概述 | 第8-11页 |
1.2.1 塞来昔布的药效 | 第9-10页 |
1.2.2 塞来昔布的作用机制 | 第10-11页 |
1.3 纳米载药系统概述 | 第11-14页 |
1.3.1 载药纳米粒特点 | 第12-14页 |
1.4 本文研究的内容与意义 | 第14-17页 |
1.4.1 研究内容 | 第14-15页 |
1.4.2 研究意义 | 第15-17页 |
第二章 CX纳米粒的制备及稳定性研究 | 第17-28页 |
2.1 引言 | 第17页 |
2.2 材料与方法 | 第17-20页 |
2.2.1 实验材料 | 第17-18页 |
2.2.2 实验仪器与设备 | 第18页 |
2.2.3 实验方法 | 第18-20页 |
2.2.3.1 酪蛋白纳米粒的制备程序 | 第18-19页 |
2.2.3.2 不同增稳剂对纳米粒稳定性的影响 | 第19页 |
2.2.3.3 不同分子量PEG对纳米粒稳定性的影响 | 第19-20页 |
2.2.3.4 不同载药量对纳米粒稳定性的影响 | 第20页 |
2.2.3.5 纳米粒的储藏稳定性研究 | 第20页 |
2.2.3.6 透射电子显微镜观察 | 第20页 |
2.2.3.7 粒径、Zeta电位、多分散指数的测定 | 第20页 |
2.3 实验结果与讨论 | 第20-27页 |
2.3.1 不同增稳剂修饰对纳米粒稳定性的增效作用 | 第20-21页 |
2.3.2 PEG分子量对PEG-CS-CX-NPs稳定性的增效作用 | 第21-22页 |
2.3.3 不同载药量对PEG35000-CS-CX-NPs稳定性的影响 | 第22-23页 |
2.3.4 纳米分散液的贮藏稳定性 | 第23-25页 |
2.3.5 PEG对 CS-CX-NPs的作用分析 | 第25-27页 |
2.4 本章小结 | 第27-28页 |
第三章 胃酶稳定的CX纳米粒及纳米化CX细胞转运 | 第28-38页 |
3.1 引言 | 第28页 |
3.2 材料与方法 | 第28-32页 |
3.2.1 实验材料 | 第28-29页 |
3.2.2 实验仪器与设备 | 第29页 |
3.2.3 实验方法 | 第29-32页 |
3.2.3.1 抗胃酶酪蛋白纳米粒的制备程序 | 第29-30页 |
3.2.3.2 不同胃酶抑制剂添加量纳米粒的抗胃酶时效性研究 | 第30-31页 |
3.2.3.3 纳米化CX的细胞转运特性研究 | 第31-32页 |
3.2.3.4 统计分析 | 第32页 |
3.3 结果与讨论 | 第32-37页 |
3.3.1 不同胃酶抑制剂添加量纳米粒的抗胃酶时效性 | 第32-35页 |
3.3.2 纳米化CX的细胞转运特性 | 第35-37页 |
3.3.2.1 酪蛋白纳米载体对Caco2细胞的毒性 | 第35-36页 |
3.3.2.2 纳米化CX对细胞跨膜电阻的影响 | 第36页 |
3.3.2.3 纳米化CX对跨膜表观通透性的影响 | 第36-37页 |
3.4 本章小结 | 第37-38页 |
第四章 塞来昔布纳米粒稳定性对抗肿瘤活性的影响 | 第38-46页 |
4.1 引言 | 第38页 |
4.2 材料与方法 | 第38-41页 |
4.2.1 材料与试剂 | 第38-40页 |
4.2.1.1 细胞株 | 第38页 |
4.2.1.2 试验动物 | 第38页 |
4.2.1.3 试剂 | 第38-39页 |
4.2.1.4 仪器与设备 | 第39-40页 |
4.2.2 试验方法 | 第40-41页 |
4.2.2.1 体外抑制活性实验 | 第40页 |
4.2.2.2 细胞培养及接种 | 第40页 |
4.2.2.3 MTT测试 | 第40页 |
4.2.2.4 体内抑制活性实验 | 第40-41页 |
4.2.2.5 统计分析方法 | 第41页 |
4.3 结果与分析 | 第41-45页 |
4.3.1 纳米粒CX稳定性对体外抑制活性 | 第41-42页 |
4.3.2 纳米粒CX稳定性对体内抑制活性 | 第42页 |
4.3.3 纳米粒CX稳定性对荷瘤裸鼠体重的影响 | 第42-43页 |
4.3.4 纳米化CX对荷瘤裸鼠肿瘤体积的影响 | 第43页 |
4.3.5 纳米化CX对荷瘤裸鼠肿瘤抑制率的影响 | 第43-45页 |
4.4 本章小结 | 第45-46页 |
第五章 结论与展望 | 第46-47页 |
5.1 结论 | 第46页 |
5.2 展望 | 第46-47页 |
参考文献 | 第47-54页 |
致谢 | 第54-55页 |