| 摘要 | 第1-11页 |
| ABSTRACT | 第11-14页 |
| 资源家系测定性状的英文缩写 | 第14-15页 |
| 缩略语表 | 第15-16页 |
| 第一章 前言 | 第16-36页 |
| 1 引言 | 第16页 |
| 2 骨骼肌发生和发育过程 | 第16-21页 |
| ·骨骼肌发生 | 第16页 |
| ·骨骼肌细胞发生的基本过程 | 第16-17页 |
| ·骨骼肌细胞的发育过程 | 第17-18页 |
| ·骨骼肌发生与发育过程中的调控因子及途径 | 第18-21页 |
| ·MRFs转录因子家族 | 第18页 |
| ·MEF2转录因子家族 | 第18-19页 |
| ·Pax3和Pax7基因 | 第19页 |
| ·HATs和HDACs基因 | 第19页 |
| ·N-cadherin和β-Catenin | 第19页 |
| ·Wnt信号途径 | 第19-20页 |
| ·其它的因子和信号途径 | 第20-21页 |
| 3 MRFs转录因子家族的研究进展 | 第21-25页 |
| ·MRFs基因的克隆 | 第21-22页 |
| ·MRFs基因的定位 | 第22页 |
| ·MRFs基因的结构和功能 | 第22-24页 |
| ·MRFs基因的遗传效应 | 第24-25页 |
| 4 MEF2转录因子家族的研究进展 | 第25-31页 |
| ·MEF2基因的定位 | 第26页 |
| ·MEF2基因的结构 | 第26-28页 |
| ·MEF2基因的生物学功能 | 第28页 |
| ·MEF2A基因的研究现状 | 第28-30页 |
| ·MEF2C基因的研究现状 | 第30-31页 |
| 5 启动子的研究方法 | 第31-34页 |
| ·启动子的克隆 | 第31-34页 |
| ·利用启动子探针载体筛选启动子 | 第31页 |
| ·利用PCR技术克隆启动子 | 第31-34页 |
| ·启动子结构和功能的研究方法 | 第34页 |
| 6 研究目的和意义 | 第34-36页 |
| 第二章 MEF2A、MEF2C和Myf6基因的分离 | 第36-63页 |
| 1 引言 | 第36页 |
| 2 试验材料 | 第36-38页 |
| ·猪组织样品 | 第36页 |
| ·主要仪器和设备 | 第36-37页 |
| ·主要药品及试剂 | 第37页 |
| ·缓冲液及常用试剂的配制 | 第37-38页 |
| 3 试验方法 | 第38-43页 |
| ·猪组织总RNA的提取 | 第38页 |
| ·SMART cDNA的合成 | 第38-39页 |
| ·cDNA第一链的合成 | 第38页 |
| ·SMART cDNA的引物延伸合成 | 第38-39页 |
| ·基因全长cDNA克隆及序列分析 | 第39-43页 |
| ·基因cDNA的电子延伸 | 第39页 |
| ·RT-PCR方法扩增cDNA序列 | 第39-40页 |
| ·cDNA产物的回收与纯化 | 第40-41页 |
| ·克隆与测序 | 第41-42页 |
| ·cDNA序列的生物信息学分析 | 第42-43页 |
| 4 结果与分析 | 第43-59页 |
| ·猪组织总RNA的提取 | 第43页 |
| ·SMART cDNA的合成 | 第43-44页 |
| ·猪MEF2A基因cDNA全序列的克隆及序列分析 | 第44-49页 |
| ·猪MEF2A基因RT-PCR和RACE-PCR扩增及测序 | 第44页 |
| ·猪MEF2A基因cDNA序列及推导的氨基酸序列 | 第44-48页 |
| ·推导的猪MEF2A基因蛋白质的基本特征分析 | 第48-49页 |
| ·猪MEF2C基因cDNA全序列的克隆及序列分析 | 第49-58页 |
| ·猪MEF2C基因RT-PCR和RACE-PCR扩增及测序 | 第49-50页 |
| ·猪MEF2C基因cDNA序列及预测的氨基酸序列 | 第50-55页 |
| ·预测的猪MEF2C基因蛋白质的基本特征分析 | 第55页 |
| ·猪MEF2C基因两种剪切体鉴定结果 | 第55-57页 |
| ·猪MEF2C基因剪切体MEF2C-2推导的蛋白质基本特征分析 | 第57-58页 |
| ·猪Myf6基因3’端RACE-PCR扩增结果 | 第58-59页 |
| 5 讨论 | 第59-63页 |
| ·EST的电脑克隆和RACE技术 | 第59-60页 |
| ·MEF2C基因的选择性剪切 | 第60-62页 |
| ·MEF2A和MEF2C基因的结构 | 第62-63页 |
| 第三章 猪MEF2C、Myf5和Myf6基因启动子的研究 | 第63-79页 |
| 1 引言 | 第63页 |
| 2 试验材料 | 第63-64页 |
| ·试验猪群体和性状测定 | 第63页 |
| ·主要药品及试剂 | 第63页 |
| ·缓冲液及常用试剂的配制 | 第63-64页 |
| 3 试验方法 | 第64-67页 |
| ·基因组DNA的提取与纯化 | 第64页 |
| ·基因组步移库的构建 | 第64-66页 |
| ·基因组DNA的质量检测 | 第64-65页 |
| ·基因组DNA的消化 | 第65页 |
| ·DNA的纯化 | 第65-66页 |
| ·连接接头 | 第66页 |
| ·基因组PCR步移 | 第66-67页 |
| ·步移产物的回收和克隆 | 第67页 |
| 4 结果与分析 | 第67-76页 |
| ·猪MEF2C基因启动子的克隆及生物信息学分析 | 第67-71页 |
| ·猪MEF2C基因启动子的获得 | 第67-70页 |
| ·生物信息学预测MEF2C核心启动子区及转录因子结合位点 | 第70-71页 |
| ·猪Myf5基因启动子的克隆及生物信息学分析 | 第71-73页 |
| ·猪Myf5基因启动子的获得 | 第71-72页 |
| ·生物信息学预测Myf5核心启动子区及转录因子结合位点 | 第72-73页 |
| ·猪Myf6基因启动子的克隆及生物信息学分析 | 第73-76页 |
| ·猪Myf6基因启动子的获得 | 第73-74页 |
| ·生物信息学预测Myf6核心启动子区及转录因子结合位点 | 第74-76页 |
| 5 讨论 | 第76-79页 |
| ·启动子克隆的方法 | 第76-77页 |
| ·MEF2C启动子分析 | 第77页 |
| ·Myf5启动子分析 | 第77-78页 |
| ·Myf6启动子分析 | 第78-79页 |
| 第四章 MRFs和MEF2家族基因的结构和遗传效应 | 第79-116页 |
| 1 引言 | 第79页 |
| 2 试验材料 | 第79-80页 |
| ·试验猪群体和性状测定 | 第79页 |
| ·主要仪器设备 | 第79-80页 |
| ·主要药品及试剂 | 第80页 |
| ·缓冲液及常用试剂的配制 | 第80页 |
| 3 试验方法 | 第80-84页 |
| ·猪基因组DNA的提取 | 第80-81页 |
| ·猪基因组DNA的浓度测定和质量检测 | 第81页 |
| ·部分基因的基因组结构分析、序列克隆 | 第81页 |
| ·多态性分析和SNP研究 | 第81-84页 |
| ·PCR扩增 | 第81-83页 |
| ·SNP的发掘 | 第83页 |
| ·PCR-RFLP分析 | 第83页 |
| ·统计分析 | 第83-84页 |
| 4 结果与分析 | 第84-110页 |
| ·MRFs和MEF2家族基因的结构和多态性 | 第84-90页 |
| ·MEF2A基因 | 第84-85页 |
| ·MEF2C基因 | 第85-87页 |
| ·Myf5基因 | 第87-88页 |
| ·MyoD基因 | 第88-89页 |
| ·Myf6基因 | 第89-90页 |
| ·MRFs和MEF2家族基因的基因型分型与遗传效应分析 | 第90-110页 |
| ·MEF2A-MspI-RFLP | 第90-93页 |
| ·Myf5-BcnI-RFLP | 第93-96页 |
| ·Myf5-Hsp92II-RFLP | 第96-99页 |
| ·Myf5-HinfI-RFLP | 第99-101页 |
| ·Myf5-MspI-RFLP | 第101-104页 |
| ·MyoD-DdeI-RFLP | 第104-107页 |
| ·Myf6-TasI-RFLP | 第107-110页 |
| 5 讨论 | 第110-116页 |
| ·SNP的研究 | 第110-111页 |
| ·MRFs和MEF2家族基因的遗传效应 | 第111-116页 |
| ·Myf5-BcnI-RFLP | 第111页 |
| ·Myf5-Hsp92II-RFLP | 第111-112页 |
| ·Myf5-HinfI-RFLP | 第112-113页 |
| ·Myf5-MspI-RFLP | 第113页 |
| ·MyoD-DdeI-RFLP | 第113-114页 |
| ·Myf6-TasI-RFLP | 第114页 |
| ·MEF2A-MspI-RFLP | 第114-116页 |
| 下一步的工作 | 第116-117页 |
| 小结 | 第117-118页 |
| 参考文献 | 第118-129页 |
| 致谢 | 第129页 |
