| 摘要 | 第1-8页 |
| Abstract | 第8-10页 |
| 缩写词表 | 第10-11页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-32页 |
| 1 甘蓝型油菜的遗传转化 | 第11-23页 |
| ·甘蓝型油菜的遗传转化方法 | 第11-16页 |
| ·基于组织培养的遗传转化 | 第11-16页 |
| ·生物介质介导的遗传转化 | 第11-14页 |
| ·物理化学介质介导的遗传转化 | 第14-16页 |
| ·非组织培养的遗传转化 | 第16页 |
| ·遗传转化在油菜遗传改良中的应用 | 第16-22页 |
| ·菜籽的品质改良 | 第16-18页 |
| ·油菜种子储藏蛋白的遗传改良 | 第16页 |
| ·油菜脂肪酸及种子含油量的遗传改良 | 第16-18页 |
| ·种子抗营养成分含量的遗传改良 | 第18页 |
| ·种子叶绿素含量的遗传改良 | 第18页 |
| ·油菜抗逆性遗传改良 | 第18-21页 |
| ·油菜的抗病遗传改良 | 第18-19页 |
| ·油菜抗虫遗传改良 | 第19页 |
| ·油菜抗除草剂的遗传改良与应用 | 第19-20页 |
| ·油菜抗其它非生物逆性的遗传改良 | 第20-21页 |
| ·油菜雄性不育的遗传改良 | 第21页 |
| ·利用转基因油菜生产生物可降解塑料成分和药用产品 | 第21-22页 |
| ·油菜的抗衰老遗传改良 | 第22页 |
| ·转基因油菜的生态安全性评价 | 第22-23页 |
| 2 植物细胞周期基因的研究进展 | 第23-30页 |
| ·细胞周期调控因子 | 第23-28页 |
| ·周期蛋白的类型及结构特征 | 第23-25页 |
| ·周期蛋白的类型及其表达 | 第23-24页 |
| ·周期蛋白的结构特征 | 第24-25页 |
| ·依赖于周期蛋白激酶的类型和结构特征 | 第25-26页 |
| ·依赖于周期蛋白激酶的类型 | 第25-26页 |
| ·依赖于周期蛋白激酶的结构特征 | 第26页 |
| ·参与细胞周期调控的其它因子 | 第26-28页 |
| ·抑制子的类型和结构特征 | 第27页 |
| ·E2F／DP和Rb等因子及其结构特征 | 第27-28页 |
| ·细胞周期基因之间的关系 | 第28页 |
| ·细胞周期基因的功能分析 | 第28-30页 |
| ·细胞分裂调控与植物形态建成 | 第28-29页 |
| ·细胞分裂调控与植物生长发育和器官形成 | 第29-30页 |
| ·促进或抑制核DNA再复制 | 第30页 |
| 3 本研究的目的意义 | 第30-32页 |
| 第二章 甘蓝型冬油菜子叶高效快速芽再生体系的建立 | 第32-43页 |
| 1 前言 | 第32页 |
| 2 材料和方法 | 第32-34页 |
| ·实验材料 | 第32页 |
| ·实验所用的培养基 | 第32-34页 |
| ·培养无菌苗 | 第34页 |
| ·不同浓度的BA对华双3号子叶外植体芽再生的影响 | 第34页 |
| ·预培养时间对华双3号子叶外植体芽再生的影响 | 第34页 |
| ·2，4-D浓度对华双3号子叶外植体芽再生的影响 | 第34页 |
| ·预培养对不同基因型子叶外植体芽再生的影响 | 第34页 |
| 3 结果与分析 | 第34-41页 |
| ·不同浓度的BA对华双3号子叶外植体芽再生和再生周期的影响 | 第34-35页 |
| ·预培养时间对华双3号子叶外植体芽再生的影响 | 第35-37页 |
| ·不同2，4-D浓度对华双3号子叶外植体芽再生的影响 | 第37-38页 |
| ·预培养对Westar和冬油菜子叶外植体芽再生的影响 | 第38-41页 |
| ·预培养对Westar子叶外植体芽再生的影响 | 第38页 |
| ·预培养对不同冬油菜子叶外植体芽再生的影响 | 第38-41页 |
| 4 讨论 | 第41-43页 |
| ·关于2，4-D对芽分化的促进作用 | 第41-42页 |
| ·关于预培养时间 | 第42页 |
| ·关于所建立的油菜子叶高效再生体系的评价 | 第42-43页 |
| 第三章 农杆菌介导的甘蓝型冬油菜快速高效转基因体系的建立 | 第43-59页 |
| 1.前言 | 第43页 |
| 2.材料和方法 | 第43-48页 |
| ·实验材料 | 第43-44页 |
| ·实验所用的培养基 | 第44页 |
| ·培养无菌苗 | 第44页 |
| ·子叶遗传转化： | 第44-45页 |
| ·不同预培养基和共培养基与农杆菌侵染 | 第44-45页 |
| ·DTT，L-Cystein和Na2S203等抗氧化剂与农杆菌侵染 | 第45页 |
| ·卡那霉素浓度与转化效率 | 第45页 |
| ·快速高效转基因体系的建立及其有效性验证 | 第45页 |
| ·下胚轴遗传转化 | 第45-46页 |
| ·不同预培养基与愈伤形成及外植体褐化 | 第46页 |
| ·MES与外植体褐化 | 第46页 |
| ·4度低温处理无菌幼苗与外植体褐化 | 第46页 |
| ·GUS基因表达的组织化学法检测 | 第46页 |
| ·转基因植株的分子检测 | 第46-48页 |
| ·DNA提取 | 第46-47页 |
| ·PCR检测 | 第47页 |
| ·Southern杂交分析； | 第47-48页 |
| ·酶切与转膜 | 第47页 |
| ·探针的制备 | 第47页 |
| ·分子杂交 | 第47-48页 |
| 3.结果与分析 | 第48-57页 |
| ·预培养和共培养对农杆菌侵染的影响 | 第48-51页 |
| ·DTT，L-Cystein和Na2S203等三种抗氧化剂对农杆菌侵染的影响 | 第51-52页 |
| ·卡那霉素对转化效率的影响 | 第52页 |
| ·预培养对不同基因型的影响 | 第52-53页 |
| ·预培养基对下胚轴愈伤形成与褐化的影响 | 第53-54页 |
| ·低温处理对下胚轴褐化的影响 | 第54页 |
| ·MES对下胚轴褐化的影响 | 第54页 |
| ·转基因植株的分子鉴定 | 第54-56页 |
| ·转基因幼苗的GUS组织化学染色 | 第56-57页 |
| 4.讨论 | 第57-59页 |
| ·DTT等抗氧化剂与子叶的褐化 | 第57页 |
| ·抗生素使用浓度的合理选择 | 第57页 |
| ·预培养及共培养时间与子叶的褐化 | 第57-58页 |
| ·预培养及共培养时间与子叶的转化效率 | 第58页 |
| ·关于遗传转化体系的适用性 | 第58页 |
| ·关于降低下胚轴的褐化 | 第58-59页 |
| 第四章 一种分离植物花粉核的新方法及不同发育时期油菜花粉核DNA含量的分析 | 第59-70页 |
| 1 前言 | 第59页 |
| 2 材料与方法 | 第59-62页 |
| ·实验材料 | 第59-60页 |
| ·花粉原生质体法分离花粉核 | 第60-61页 |
| ·花粉收集 | 第60页 |
| ·收集花粉的质量 | 第60页 |
| ·花粉酶解 | 第60-61页 |
| ·花粉核收集和测定 | 第61页 |
| ·渗透法分离花粉细胞核 | 第61页 |
| ·刀剁法分离花粉核 | 第61页 |
| ·研磨法分离花粉核 | 第61页 |
| ·超声波法分离花粉核 | 第61页 |
| ·超声波处理时间对花粉核释放量的影响 | 第61-62页 |
| ·超声波处理时间与测定结果 | 第62页 |
| ·花粉核DNA的提取 | 第62页 |
| ·流式细胞仪测定花粉核DNA的含量 | 第62页 |
| ·DTT与烟草叶片核DNA含量 | 第62页 |
| 3 结果与分析 | 第62-67页 |
| ·分离花粉的质量 | 第62-63页 |
| ·原生质体法分离花粉核的质量 | 第63页 |
| ·刀剁法分离花粉核的质量 | 第63-64页 |
| ·研磨法分离花粉核 | 第64页 |
| ·组织渗透法分离花粉核 | 第64页 |
| ·超声波处理时间与核释放量及其质量 | 第64-65页 |
| ·超声波处理时间与测量效果 | 第65-66页 |
| ·利用超声波法分离油菜不同时期的花粉核并测定其DNA含量 | 第66-67页 |
| ·利用超声波法分离小麦成熟花粉核并测定其DNA含量 | 第67页 |
| 4.讨论 | 第67-70页 |
| ·关于花粉核的分离 | 第67-68页 |
| ·关于油菜花粉细胞核的倍性 | 第68-69页 |
| ·关于超声波法分离花粉核的适用性 | 第69-70页 |
| 第五章 利用农杆菌介导法将细胞周期基因导入甘蓝型油菜及其花粉特异表达分析 | 第70-85页 |
| 1 前言 | 第70-71页 |
| 2 材料与方法 | 第71-73页 |
| ·实验材料、农杆菌菌株和转化载体 | 第71页 |
| ·油菜遗传转化和植株再生 | 第71页 |
| ·转基因植株的分子检测 | 第71-72页 |
| ·DNA提取 | 第71页 |
| ·抗性植株的PCR检测 | 第71-72页 |
| ·Southern杂交 | 第72页 |
| ·RNA提取 | 第72页 |
| ·RT-PCR | 第72页 |
| ·花粉的细胞学观察 | 第72-73页 |
| ·光学显微镜观察 | 第72-73页 |
| ·扫描电镜观察 | 第73页 |
| ·花粉的萌发 | 第73页 |
| ·花粉核DNA含量的测定 | 第73页 |
| ·花粉核分裂的活体观察 | 第73页 |
| 3 结果与分析 | 第73-83页 |
| ·抗性植株的分子检测 | 第74-75页 |
| ·转基因植株的RT-PCR检测 | 第75页 |
| ·T1代株系的花粉光学显微镜观察 | 第75-77页 |
| ·花粉扫描电镜观察 | 第77-79页 |
| ·花粉萌发 | 第79-80页 |
| ·CycD2促进细胞分裂 | 第80-82页 |
| ·DNA含量的测定 | 第82-83页 |
| ·花粉核分裂的时间 | 第83页 |
| 4.讨论 | 第83-85页 |
| ·细胞周期基因在植物中的表现 | 第83-84页 |
| ·细胞周期基因的应用前景 | 第84-85页 |
| 参考文献 | 第85-100页 |
| 个人简历 | 第100-101页 |
| 博士在读期间发表或已接受或已投稿的文章 | 第101-102页 |
| 致谢 | 第102页 |
