| 中文摘要 | 第1-12页 |
| ABSTRACT | 第12-16页 |
| 英文缩略词一览表 | 第16-18页 |
| 第一章 文献综述 | 第18-42页 |
| 1 抑制素 | 第18-29页 |
| ·抑制素来源 | 第18页 |
| ·抑制素基因的分子结构 | 第18-19页 |
| ·抑制素分泌与表达 | 第19-20页 |
| ·抑制素作用机理 | 第20-24页 |
| ·抑制素基因的克隆和定位 | 第24-26页 |
| ·抑制素基因的多态性及其与绵、山羊繁殖力相关性研究 | 第26-27页 |
| ·抑制素免疫 | 第27-28页 |
| ·抑制素受体 | 第28-29页 |
| 2 活化素 | 第29-31页 |
| ·活化素的来源及结构 | 第29页 |
| ·活化素对生殖的作用 | 第29-31页 |
| ·活化素受体 | 第31页 |
| ·活化素在动物繁殖中的应用 | 第31页 |
| 3 抑制素和活化素的关系 | 第31-32页 |
| 4 PCR-SSCP技术 | 第32-33页 |
| 5 实时荧光定量PCR | 第33-38页 |
| ·实时荧光定量PCR概述 | 第33-34页 |
| ·实时荧光定量PCR方法 | 第34-35页 |
| ·实时荧光定量PCR引物和探针设计要求 | 第35-37页 |
| ·实时荧光定量PCR在畜牧领域的应用 | 第37-38页 |
| 6 实验羊只概况 | 第38-42页 |
| ·南江黄羊 | 第38-39页 |
| ·大足黑山羊 | 第39页 |
| ·萨能奶山羊 | 第39-42页 |
| 第二章 引言 | 第42-44页 |
| 第三章 山羊血浆中INHB、ACTA和FSH含量比较分析 | 第44-60页 |
| 1 实验材料 | 第44-46页 |
| ·实验羊只的选择与管理 | 第44页 |
| ·实验羊只的处理和样本的采集 | 第44-45页 |
| ·主要试剂、耗材和仪器设备 | 第45-46页 |
| 2 实验方法 | 第46-47页 |
| ·血浆中FSH、INHB和ACTA水平的测定 | 第46-47页 |
| ·统计分析方法 | 第47页 |
| 3 实验结果 | 第47-56页 |
| ·大足黑山羊FSH、ACTA和INHB分泌变化分析 | 第47-49页 |
| ·南江黄羊FSH、ACTA和INHB分泌变化分析 | 第49-50页 |
| ·萨能奶山羊FSH、ACTA和INHB分泌变化分析 | 第50-52页 |
| ·FSH、ACTA和INHB在3个山羊品种(遗传资源)中的比较分析 | 第52-56页 |
| 4 讨论 | 第56-58页 |
| ·3个山羊品种(遗传资源)发情周期 | 第56页 |
| ·3个山羊品种(遗传资源)的卵泡期及分泌峰值 | 第56-57页 |
| ·3个羊种FSH、ACTA和INHB分泌特点分析 | 第57-58页 |
| 5 小结 | 第58-60页 |
| 第四章 山羊INHα、INHβA和INHβB亚基基因的克隆及序列分析 | 第60-82页 |
| 1 实验材料 | 第60-62页 |
| ·实验羊只的来源与样本采集 | 第60页 |
| ·主要试剂和实验耗材 | 第60-61页 |
| ·主要仪器设备 | 第61页 |
| ·主要试剂配制 | 第61-62页 |
| 2 实验方法 | 第62-67页 |
| ·总RNA提取及检测 | 第62-63页 |
| ·引物设计 | 第63页 |
| ·cDNA第一链的合成 | 第63页 |
| ·cDNA序列的PCR扩增 | 第63-64页 |
| ·PCR产物的回收和纯化 | 第64-65页 |
| ·克隆 | 第65-66页 |
| ·测序 | 第66页 |
| ·序列分析 | 第66-67页 |
| 3 实验结果 | 第67-78页 |
| ·卵巢组织总RNA的提取 | 第67页 |
| ·INHα、INHβA和INHβB亚基基因PCR扩增结果 | 第67-69页 |
| ·山羊INHα、INHβA和INHβB亚基基因cDNA序列分析 | 第69-78页 |
| 4 讨论 | 第78-81页 |
| ·山羊组织中的总RNA的提取 | 第78-79页 |
| ·山羊INHα、INHβA和INHβB序列结构 | 第79页 |
| ·山羊INHα、INHβA和INHβB亚基基因序列多态性 | 第79-81页 |
| 5 小结 | 第81-82页 |
| 第五章 山羊INHα、INHβA和INHβB亚基基因多态性分析 | 第82-110页 |
| 1 实验材料 | 第83-84页 |
| ·实验羊只来源及样本采集 | 第83页 |
| ·主要试剂及耗材 | 第83页 |
| ·主要仪器设备 | 第83页 |
| ·主要试剂配制 | 第83-84页 |
| 2 实验方法 | 第84-89页 |
| ·基因组DNA的提取 | 第84页 |
| ·DNA浓度和纯度的检测 | 第84-85页 |
| ·引物的设计和合成 | 第85页 |
| ·PCR反应条件和反应体系 | 第85-86页 |
| ·PCR产物的回收纯化 | 第86页 |
| ·克隆 | 第86页 |
| ·序列测定 | 第86-87页 |
| ·非变性聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第87页 |
| ·统计分析 | 第87-89页 |
| 3 实验结果 | 第89-99页 |
| ·基因组DNA提取结果 | 第89页 |
| ·PCR扩增结果 | 第89-91页 |
| ·INHα外显子1多态性分析 | 第91-93页 |
| ·INHα外显子2多态性分析 | 第93-97页 |
| ·INHβA外显子部分序列多态性分析 | 第97-99页 |
| ·INHβB外显子1和外显子2多态性分析 | 第99页 |
| 4 讨论 | 第99-108页 |
| ·PCR反应条件和反应体系的优化 | 第99-103页 |
| ·PCR-SSCP检测 | 第103-105页 |
| ·INHα外显子1的多态性 | 第105页 |
| ·INHα外显子2的多态性 | 第105-107页 |
| ·INHβA外显子部分序列的多态性 | 第107页 |
| ·INHβB外显子1和外显子2的多态性 | 第107-108页 |
| 5 小结 | 第108-110页 |
| 第六章 山羊INHα、INHβA和INHβB亚基基因的定量表达 | 第110-124页 |
| 1 实验材料和方法 | 第110-112页 |
| ·实验材料 | 第110页 |
| ·实验方法 | 第110-112页 |
| 2 实验结果 | 第112-121页 |
| ·INHα亚基基因在组织中的表达 | 第112-115页 |
| ·INHβA亚基基因在组织中的表达 | 第115-117页 |
| ·INHβB亚基基因在组织中的表达 | 第117-121页 |
| 3 讨论 | 第121-123页 |
| ·不同羊种INHα、INHβA和INHβB亚基基因表达差异分析 | 第121-122页 |
| ·不同组织INHα、INHβA和INHβB亚基基因表达差异分析 | 第122-123页 |
| 4 小结 | 第123-124页 |
| 第七章 结论 | 第124-126页 |
| 参考文献 | 第126-136页 |
| 附录 | 第136-142页 |
| 致谢 | 第142-144页 |
| 在读期间发表的论文、参加课题及获奖 | 第144-145页 |
