摘要 | 第1-7页 |
ABSTRACT | 第7-9页 |
致谢 | 第9-15页 |
第一章 绪论 | 第15-27页 |
·植物耐盐机制研究进展 | 第15-21页 |
·盐胁迫对植物的影响 | 第15-19页 |
·盐胁迫对植物形态生长发育的影响 | 第16页 |
·盐胁迫对植物生理代谢过程的影响 | 第16-18页 |
·盐胁迫对植物细胞超微结构的影响 | 第18-19页 |
·植物耐盐的机理 | 第19-20页 |
·渗透调节 | 第19页 |
·离子调节 | 第19-20页 |
·活性氧清除机制 | 第20页 |
·盐胁迫与信号转导 | 第20-21页 |
·植物抗旱机制研究进展 | 第21-25页 |
·旱胁迫对植物的影响 | 第22页 |
·植物抗旱的分子机理 | 第22-25页 |
·干旱应答基因及转录因子 | 第22页 |
·干旱胁迫信号传递途径 | 第22-25页 |
·模式植物拟南芥的生物学特性 | 第25-26页 |
·本研究的目的及意义 | 第26-27页 |
第二章 实验材料与方法 | 第27-41页 |
·实验材料与实验试剂 | 第27-31页 |
·实验材料 | 第27页 |
·实验主要试剂及药品 | 第27页 |
·常用溶液与试剂的配制 | 第27-30页 |
·缓冲液 | 第27-28页 |
·染色剂 | 第28页 |
·其它试剂 | 第28-29页 |
·拟南芥培养液母液配方 | 第29-30页 |
·主要实验仪器 | 第30-31页 |
·实验方法 | 第31-41页 |
·拟南芥突变体的遗传学分析 | 第31-32页 |
·拟南芥的种植与培养 | 第32-33页 |
·植物离体叶片失水率 | 第33页 |
·植物组织相对含水量 | 第33-34页 |
·植物体内游离脯氨酸含量的测定 | 第34页 |
·植物体内可溶性糖含量的测定 | 第34-35页 |
·拟南芥总RNA的提取 | 第35-36页 |
·RT-PCR | 第36-38页 |
·QRT-PCR | 第38-39页 |
·实验数据处理及统计分析 | 第39-40页 |
·发芽率数据处理 | 第39页 |
·根长数据处理 | 第39页 |
·遗传性状分离数据处理 | 第39-40页 |
·实验技术路线 | 第40-41页 |
第三章 结果与分析 | 第41-72页 |
·DSR1基因表达模式分析 | 第41-43页 |
·突变体的基因敲除鉴定 | 第41页 |
·DSR1基因的组织特异性表达 | 第41-42页 |
·DSR1基因的干旱胁迫条件下的诱导表达 | 第42-43页 |
·DSR1基因结构分析 | 第43-45页 |
·DSR1基因同源性分析 | 第43-45页 |
·突变体dsr1-1、dsr1-2的生长和发育 | 第45-47页 |
·突变体dsr1-1、dsr1-2土培下的表型 | 第45页 |
·MS培养的突变体dsr1-1、dsr1-2的表型 | 第45-47页 |
·突变体dsr1-1、dsr1-2对NaCl的胁迫响应 | 第47-51页 |
·突变体dsr1-1、dsr1-2在NaCl处理后的表型与生理数据 | 第47-50页 |
·NaCl胁迫下的相关基因表达 | 第50-51页 |
·突变体dsr1-1、dsr1-2对KCl、LiCl的胁迫响应 | 第51-53页 |
·突变体dsr1-1、dsr1-2对甘露醇的胁迫响应 | 第53-57页 |
·突变体dsr1-1、dsr1-2在甘露醇处理后的表型与生理数据 | 第53-56页 |
·甘露醇胁迫下的相关基因表达 | 第56-57页 |
·突变体dsr1-1、dsr1-2对干旱的胁迫响应 | 第57-65页 |
·干旱处理条件下突变体的表型 | 第57-59页 |
·野生型及突变体离体叶片失水表型与失水率对比 | 第59-60页 |
·野生型及突变体dsr1-1、dsr1-2植株叶片相对含水量 | 第60-61页 |
·干旱胁迫条件下可溶性总糖含量的积累 | 第61页 |
·干旱胁迫条件下脯氨酸的积累 | 第61-62页 |
·干旱胁迫下相关基因的表达 | 第62-65页 |
·突变体dsr1-1、dsr1-2对ABA胁迫响应 | 第65-68页 |
·突变体dsr1-1、dsr1-2在ABA处理后的表型与生理数据 | 第65-67页 |
·ABA胁迫下的相关基因表达 | 第67-68页 |
·突变体dsr1-1、dsr1-2对H_2O_2的胁迫响应 | 第68-72页 |
第四章 讨论 | 第72-75页 |
·讨论与结论 | 第72-74页 |
·后续工作展望 | 第74-75页 |
参考文献 | 第75-81页 |
附录:硕士期间发明专利与发表文章 | 第81页 |