中文摘要 | 第4-8页 |
Abstract | 第8-11页 |
缩略语/符号说明 | 第15-17页 |
前言 | 第17-21页 |
研究现状、成果 | 第17-20页 |
研究目的 | 第20-21页 |
一、α-MSH对早期糖尿病大鼠视网膜的保护作用 | 第21-38页 |
1.1 对象和方法 | 第22-26页 |
1.1.1 实验动物 | 第22-23页 |
1.1.2 糖尿病大鼠模型诱导 | 第23页 |
1.1.3 大鼠玻璃体腔注射 | 第23-24页 |
1.1.4 伊文思蓝染色实验 | 第24-25页 |
1.1.5 透射电子显微镜实验 | 第25页 |
1.1.6 视网膜视觉电生理检查(ERG) | 第25页 |
1.1.7 苏木精和伊红染色实验(H&E染色) | 第25-26页 |
1.2 结果 | 第26-35页 |
1.2.1 鼠尾静脉注射STZ诱导糖尿病大鼠模型 | 第26-27页 |
1.2.2 α-MSH通过抑制血-视网膜屏障BRB的损伤及血管渗漏作用而形成对于早期糖尿病中视网膜的保护作用 | 第27-29页 |
1.2.3 α-MSH可以改善早期糖尿病视网膜中的脉络膜及视网膜的血管微结构 | 第29-31页 |
1.2.4 α-MSH可以改善早期糖尿病视网膜的电生理功能 | 第31-33页 |
1.2.5 α-MSH可以增加早期糖尿病中视网膜的厚度 | 第33-35页 |
1.3 讨论 | 第35-37页 |
1.4 小结 | 第37-38页 |
二、α-MSH对于早期糖尿大鼠视网膜中血管渗漏的保护作用的机制研究 | 第38-62页 |
2.1 对象和方法 | 第43-51页 |
2.1.1 实验动物 | 第43页 |
2.1.2 糖尿病大鼠模型诱导 | 第43页 |
2.1.3 大鼠玻璃体腔注射 | 第43-44页 |
2.1.4 收集大鼠视网膜标本 | 第44页 |
2.1.5 实验RF6A细胞培养、传代和冻存 | 第44-45页 |
2.1.6 使用高糖溶液处理视网膜血管内皮细胞 | 第45页 |
2.1.7 RNA提取与反转录 | 第45页 |
2.1.8 标准PCR | 第45页 |
2.1.9 实时定量PCR | 第45-47页 |
2.1.10 提取视网膜样本的蛋白质 | 第47页 |
2.1.11 WesternBlots | 第47-48页 |
2.1.12 酶联免疫吸附测定实验 | 第48页 |
2.1.13 跨内皮细胞电阻实验 | 第48-49页 |
2.1.14 测量视网膜微血管内皮细胞单层的透过性实验 | 第49页 |
2.1.15 使用高糖高脂刺激视网膜血管内皮细胞 | 第49-50页 |
2.1.16 RNA测序技术分析表达变化的非编码长链RNA | 第50-51页 |
2.1.17 统计方法 | 第51页 |
2.2 结果 | 第51-57页 |
2.2.1 α-MSH可以纠正在早期糖尿病大鼠视网膜中异常表达的炎性因子的mRNA和蛋白表达 | 第51-54页 |
2.2.2 α-MSH可以通过MC4R途径来降低在高糖处理视网膜微血管内皮细胞中的渗透性并且可以提高跨内皮细胞电阻TEER | 第54-56页 |
2.2.3 RNA芯片技术分析α-MSH处理的视网膜血管内皮细胞 | 第56-57页 |
2.3 讨论 | 第57-61页 |
2.4 小结 | 第61-62页 |
三、α-MSH抑制视网膜新生血管的研究 | 第62-75页 |
3.1 对象和方法 | 第65-67页 |
3.1.1 实验动物 | 第65页 |
3.1.2 主要试剂及仪器 | 第65页 |
3.1.3 OIR小鼠模型建立 | 第65-66页 |
3.1.4 玻璃体腔注射 | 第66页 |
3.1.5 小鼠视网膜血管荧光造影方法 | 第66-67页 |
3.1.6 各组眼球组织常规组织病理学检查 | 第67页 |
3.1.7 OIR小鼠视网膜蛋白芯片 | 第67页 |
3.1.8 统计方法 | 第67页 |
3.2 结果 | 第67-72页 |
3.2.1 各组小鼠视网膜荧光血管造影 | 第67-69页 |
3.2.2 各组小鼠眼球组织病理学切片 | 第69-71页 |
3.2.3 OIR小鼠视网膜蛋白芯片实验结果 | 第71-72页 |
3.3 讨论 | 第72-74页 |
3.4 小结 | 第74-75页 |
全文结论 | 第75-76页 |
论文创新点 | 第76-77页 |
参考文献 | 第77-90页 |
发表论文和参加科研情况说明 | 第90-91页 |
综述 表观遗传学在糖尿病和糖尿病视网膜病变中的作用机制研究 | 第91-103页 |
综述参考文献 | 第98-103页 |
致谢 | 第103-104页 |
个人简历 | 第104页 |