| 致谢 | 第5-6页 |
| 摘要 | 第6-9页 |
| ABSTRACT | 第9-11页 |
| 缩略语 | 第12-18页 |
| 绪论 | 第18-22页 |
| 第一章 光热联合光动力给药系统的构建及理化性质表征 | 第22-44页 |
| 1.1 引言 | 第22-23页 |
| 1.2 试剂与仪器 | 第23-24页 |
| 1.2.1 试剂 | 第23页 |
| 1.2.2 仪器 | 第23-24页 |
| 1.3 实验方法 | 第24-29页 |
| 1.3.1 细胞培养 | 第24页 |
| 1.3.2 中空金纳米球(HAuNS)的制备 | 第24页 |
| 1.3.3 光热联合光动力给药系统(ICG-PEI-HAuNS)的构建 | 第24-26页 |
| 1.3.4 ICG-PEI-HAuNS的理化性质表征 | 第26-29页 |
| 1.4 结果与讨论 | 第29-42页 |
| 1.4.1 ICG-PEI-HAuNS的结构确证 | 第29-31页 |
| 1.4.2 ICG-PEI-HAuNS的粒径、表面电位、包封率及载药量 | 第31-32页 |
| 1.4.3 ICG-PEI-HAuNS的形态结构观察及元素分析 | 第32-34页 |
| 1.4.4 ICG-PEI-HAuNS的紫外吸收光谱分析 | 第34-35页 |
| 1.4.5 ICG-PEI-HAuNS的稳定性研究 | 第35-42页 |
| 1.5 本章小结 | 第42-44页 |
| 第二章 光热联合光动力给药系统体外抗肿瘤效果 | 第44-64页 |
| 2.1 引言 | 第44页 |
| 2.2 试剂与仪器 | 第44-45页 |
| 2.2.1 试剂 | 第44-45页 |
| 2.2.2 仪器 | 第45页 |
| 2.3 实验方法 | 第45-49页 |
| 2.3.1 细胞培养 | 第45页 |
| 2.3.2 ICG-PEI-HAuNS的体外光热效应研究 | 第45页 |
| 2.3.3 ICG-PEI-HAuNS的体外光动力效应研究 | 第45-47页 |
| 2.3.4 ICG-PEI-HAuNS的体外抗肿瘤效果研究 | 第47-48页 |
| 2.3.5 ICG-PEI-HAuNS对3D肿瘤球的作用 | 第48-49页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第49-63页 |
| 2.4.1 ICG-PEI-HAuNS的体外光热效应 | 第49-51页 |
| 2.4.2 ICG-PEI-HAuNS的体外光动力效应 | 第51-55页 |
| 2.4.3 ICG-PEI-HAuNS的体外抗肿瘤效应 | 第55-60页 |
| 2.4.4 ICG-PEI-HAuNS对3D肿瘤球的作用 | 第60-63页 |
| 2.5 本章小结 | 第63-64页 |
| 第三章 光热联合光动力给药系统体内抗肿瘤及其转移效果 | 第64-88页 |
| 3.1 引言 | 第64页 |
| 3.2 试剂与仪器 | 第64-65页 |
| 3.2.1 试剂 | 第64-65页 |
| 3.2.2 仪器 | 第65页 |
| 3.3 实验方法 | 第65-69页 |
| 3.3.1 细胞培养 | 第65页 |
| 3.3.2 荷瘤小鼠模型建立 | 第65页 |
| 3.3.3 ICG-PEI-HAuNS在荷瘤小鼠体内经时分布研究 | 第65-66页 |
| 3.3.4 ICG-PEI-HAuNS的体内光热效应研究 | 第66页 |
| 3.3.5 ICG-PEI-HAuNS的体内光动力效应研究 | 第66-67页 |
| 3.3.6 ICG-PEI-HAuNS的抗肿瘤药效学研究 | 第67-68页 |
| 3.3.7 ICG-PEI-HAuNS的抗肿瘤转移效果 | 第68-69页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第69-87页 |
| 3.4.1 ICG-PEI-HAuNS在荷瘤小鼠体内经时分布 | 第69-74页 |
| 3.4.2 ICG-PEI-HAuNS的体内光热效应 | 第74-75页 |
| 3.4.3 ICG-PEI-HAuNS的体内光动力效应 | 第75-76页 |
| 3.4.4 ICG-PEI-HAuNS的体内抗肿瘤药效学 | 第76-80页 |
| 3.4.5 ICG-PEI-HAuNS的抗肿瘤转移效果 | 第80-87页 |
| 3.5 本章小结 | 第87-88页 |
| 第四章 主动靶向修饰及抗光动力耐药机制研究 | 第88-134页 |
| 4.1 引言 | 第88页 |
| 4.2 试剂与仪器 | 第88-90页 |
| 4.2.1 试剂 | 第88-89页 |
| 4.2.2 仪器 | 第89-90页 |
| 4.3 实验方法 | 第90-99页 |
| 4.3.1 细胞培养 | 第90页 |
| 4.3.2 荷瘤小鼠模型建立 | 第90页 |
| 4.3.3 ICG-PEI-HAuNS的主动靶向修饰 | 第90-91页 |
| 4.3.4 主动靶向光热联合光动力给药系统(TNYL-ICG-HAuNS)的核磁共振氢谱分析 | 第91页 |
| 4.3.5 TNYL-ICG-HAuNS的紫外光谱扫描 | 第91页 |
| 4.3.6 TNYL-ICG-HAuNS的形态结构观察 | 第91-92页 |
| 4.3.7 TNYL-ICG-HAuNS在激光照射下的稳定性研究 | 第92页 |
| 4.3.8 TNYL-ICG-HAuNS的体外特异性靶向及细胞内定位 | 第92-93页 |
| 4.3.9 TNYL-ICG-HAuNS的体外抗肿瘤效果以及光动力类型验证 | 第93-94页 |
| 4.3.10 TNYL-ICG-HAuNS的抗光动力耐药机制研究 | 第94-96页 |
| 4.3.11 TNYL-ICG-HAuNS在体内主动靶向分布研究 | 第96-97页 |
| 4.3.12 TNYL-ICG-HAuNS的体内光声成像 | 第97页 |
| 4.3.13 TNYL-ICG-HAuNS的体内光热联合光动力效应研究 | 第97-98页 |
| 4.3.14 TNYL-ICG-HAuNS的抗肿瘤药效学研究 | 第98-99页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第99-131页 |
| 4.4.1 TNYL-ICG-HAuNS的结构确证及形态观察 | 第99-100页 |
| 4.4.2 TNYL-ICG-HAuNS的紫外光谱特征 | 第100-101页 |
| 4.4.3 TNYL-ICG-HAuNS在激光照射下的稳定性 | 第101-102页 |
| 4.4.4 TNYL-ICG-HAuNS的体外特异性靶向及细胞内定位 | 第102-105页 |
| 4.4.5 TNYL-ICG-HAuNS的体外抗肿瘤效果以及光动力类型验证 | 第105-110页 |
| 4.4.6 TNYL-ICG-HAuNS的抗光动力耐药机制研究 | 第110-120页 |
| 4.4.7 TNYL-ICG-HAuNS的光声成像研究 | 第120-122页 |
| 4.4.8 TNYL-ICG-HAuNS在体内主动靶向分布研究 | 第122-125页 |
| 4.4.9 TNYL-ICG-HAuNS的体内光热联合光动力效应研究 | 第125-127页 |
| 4.4.10 TNYL-ICG-HAuNS的抗肿瘤药效学研究 | 第127-131页 |
| 4.5 本章小结 | 第131-134页 |
| 第五章 氧传递协同促进ICG-PEI-HAuNS光动力治疗研究 | 第134-148页 |
| 5.1 引言 | 第134页 |
| 5.2 试剂与仪器 | 第134-135页 |
| 5.2.1 试剂 | 第134-135页 |
| 5.2.2 仪器 | 第135页 |
| 5.3 实验方法 | 第135-138页 |
| 5.3.1 细胞培养 | 第135页 |
| 5.3.2 荷瘤小鼠模型建立 | 第135页 |
| 5.3.3 血红蛋白脂质体(Hb-lipo)的制备 | 第135-136页 |
| 5.3.4 氧传递Hb-lipo体外促进单线态氧产率 | 第136页 |
| 5.3.5 氧传递Hb-lipo细胞内促进活性氧产率 | 第136页 |
| 5.3.6 氧传递Hb-lipo体外促进光动力抗肿瘤效果 | 第136页 |
| 5.3.7 氧传递Hb-lipo在小鼠体内经时分布研究 | 第136-137页 |
| 5.3.8 氧传递Hb-lipo体内促进光动力抗肿瘤效果研究 | 第137页 |
| 5.3.9 氧传递Hb-lipo改善肿瘤低氧环境研究 | 第137-138页 |
| 5.4 结果与讨论 | 第138-146页 |
| 5.4.1 氧传递Hb-lipo体外促进单线态氧产率 | 第138-139页 |
| 5.4.2 氧传递Hb-lipo细胞内促进活性氧产率 | 第139-140页 |
| 5.4.3 氧传递Hb-lipo体外促进光动力抗肿瘤效果 | 第140-142页 |
| 5.4.4 氧传递Hb-lipo在小鼠体内经时分布研究 | 第142-143页 |
| 5.4.5 氧传递Hb-lipo体内促进光动力抗肿瘤效果研究 | 第143-145页 |
| 5.4.6 氧传递Hb-lipo改善肿瘤低氧环境 | 第145-146页 |
| 5.5 本章小结 | 第146-148页 |
| 全文总结 | 第148-152页 |
| 参考文献 | 第152-160页 |
| 文献综述 | 第160-198页 |
| 参考文献 | 第184-198页 |
| 作者简介 | 第198-201页 |
