| 中文摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-7页 |
| 中英文缩略词表 | 第10-11页 |
| 引言 | 第11-13页 |
| 实验研究 | 第13-34页 |
| 1 实验材料 | 第13-14页 |
| 1.1 实验动物 | 第13页 |
| 1.2 实验药品及试剂 | 第13-14页 |
| 1.3 主要实验器材 | 第14页 |
| 2 实验方法 | 第14-26页 |
| 2.2 动物分组 | 第14页 |
| 2.3 动物造模 | 第14-18页 |
| 2.4 治疗方法 | 第18-19页 |
| 2.5 标本采集 | 第19-21页 |
| 2.6 实时荧光定量PCR实验步骤 | 第21-24页 |
| 2.7 统计学处理 | 第24-25页 |
| 2.8 技术路线 | 第25-26页 |
| 3 实验结果 | 第26-34页 |
| 3.1 大鼠神经功能评分 | 第26-27页 |
| 3.2 脑缺血模型完成情况 | 第27-28页 |
| 3.3 缺血半暗带脑组织TLR2mRNA表达水平的比较 | 第28-30页 |
| 3.4 缺血半暗带脑组织NF-κBmRNA表达水平的比较 | 第30-32页 |
| 3.5 缺血半暗带脑组织TRAF6mRNA表达水平的比较 | 第32-34页 |
| 讨论 | 第34-44页 |
| 1 对缺血性脑卒中的认识 | 第34-35页 |
| 1.1 缺血性脑卒中的流行病学及治疗现状 | 第34页 |
| 1.2 缺血再灌注损伤的危害性 | 第34-35页 |
| 1.3 炎症反应参与缺血再灌注损伤 | 第35页 |
| 2 脑缺血模型及实验动物的选择 | 第35-37页 |
| 2.1 脑缺血模型制备方法的选择 | 第36页 |
| 2.2 实验对象的选择 | 第36-37页 |
| 3 电针在缺血性脑卒中的应用 | 第37-38页 |
| 4 实验结果讨论 | 第38-44页 |
| 4.1 电针对缺血性大鼠模型TLR2的作用 | 第38-39页 |
| 4.2 电针对缺血性大鼠模型NF-κB的作用 | 第39-41页 |
| 4.3 电针对缺血性大鼠模型TRAF6的作用 | 第41-42页 |
| 4.4 电针对缺血性大鼠模型TLR2/NF-κB信号通路的作用 | 第42-43页 |
| 4.5 电针改善大鼠神经功能缺损与炎症信号通路的关系 | 第43-44页 |
| 结论 | 第44-45页 |
| 论文的创新点 | 第45-46页 |
| 问题与展望 | 第46-47页 |
| 致谢 | 第47-48页 |
| 参考文献 | 第48-53页 |
| 附件1：文献综述 针治疗缺血性脑卒中的研究进展 | 第53-63页 |
| 参考文献 | 第59-63页 |
| 附件2：在读期间公开发表的学术论文、专著及科研成果 | 第63-64页 |
