摘要 | 第3-5页 |
Abstract | 第5-7页 |
英文缩写及中英文对照表 | 第11-12页 |
第一章 文献综述 | 第12-24页 |
1.1 古树的寿命及老化的概念 | 第12-13页 |
1.2 树木老化过程中生理水平的变化 | 第13-15页 |
1.2.1 植物激素水平的变化 | 第13-14页 |
1.2.2 与年龄相关的水分和光合作用的变化 | 第14-15页 |
1.3 树木老化过程分子机制调控研究 | 第15-19页 |
1.3.1 响应年龄变化的转录调控 | 第16-17页 |
1.3.2 响应年龄变化的miRNA及其靶基因调控 | 第17-18页 |
1.3.3 DNA甲基化和端粒在树木老化过程中的调控 | 第18-19页 |
1.4 维管形成层研究进展 | 第19-21页 |
1.4.1 维管形成层的年周期变化 | 第19页 |
1.4.2 调控维管形成层分化的分子调控机制 | 第19-21页 |
1.5 银杏古树的研究进展 | 第21-23页 |
1.5.1 我国银杏古树的数量及分布 | 第21-22页 |
1.5.2 我国银杏古树的生物学特征 | 第22-23页 |
1.6 本研究的目的和意义 | 第23-24页 |
第二章 材料与方法 | 第24-30页 |
2.1 实验材料 | 第24页 |
2.2 不同生长时期形成层细胞的半薄和超微结构观察 | 第24-26页 |
2.2.1 实验仪器和软件 | 第24页 |
2.2.2 试剂配置 | 第24页 |
2.2.3 实验方法 | 第24-26页 |
2.3 不同年龄银杏树的年轮测定和分析 | 第26页 |
2.3.1 实验仪器和软件 | 第26页 |
2.3.2 实验方法 | 第26页 |
2.4 不同年龄银杏形成层的激素测定 | 第26-27页 |
2.4.1 实验仪器与试剂 | 第26页 |
2.4.2 实验方法 | 第26-27页 |
2.5 不同年龄银杏形成层的高通量测序分析 | 第27-28页 |
2.5.1 实验仪器与试剂 | 第27页 |
2.5.2 实验方法 | 第27-28页 |
2.6 荧光定量PCR实验 | 第28-30页 |
2.6.1 实验仪器与试剂 | 第28页 |
2.6.2 引物设计与合成 | 第28页 |
2.6.3 实验方法 | 第28-30页 |
第三章 结果与分析 | 第30-58页 |
3.1 银杏形成层年周期的划分 | 第30页 |
3.2 不同生长时期银杏形成层细胞的半薄及超微结构观察 | 第30-35页 |
3.3 不同树龄银杏的年轮分析及形态学观察 | 第35-38页 |
3.4 不同树龄银杏树形成层的生理水平变化 | 第38-39页 |
3.5 不同树龄银杏形成层的小RNA组学分析 | 第39-48页 |
3.5.1 small RNA测序结果概况 | 第39-42页 |
3.5.2 已知miRNA分析和新miRNA的预测 | 第42-44页 |
3.5.3 不同树龄银杏形成层中miRNA表达及差异分析 | 第44-45页 |
3.5.4 具有年龄效应的miRNA靶基因功能分析 | 第45-48页 |
3.6 不同树龄银杏形成层降解组学分析 | 第48-51页 |
3.6.1 降解组数据概况 | 第48-49页 |
3.6.2 miRNA降解位点鉴定 | 第49-50页 |
3.6.3 降解片段功能注释 | 第50-51页 |
3.7 转录组、小RNA和降解组联合分析 | 第51-56页 |
3.7.1 与细胞分裂分化相关的miRNA及靶基因分析 | 第51-53页 |
3.7.2 与植物激素相关的miRNA及靶基因分析 | 第53-55页 |
3.7.3 与次生代谢相关的miRNA及靶基因分析 | 第55-56页 |
3.8 荧光定量PCR实验验证 | 第56-58页 |
3.8.1 不同生长时期银杏形成层中miRNA表达量变化 | 第56-57页 |
3.8.2 细胞分裂分化相关基因的验证 | 第57-58页 |
第四章 分析与讨论 | 第58-62页 |
4.1 银杏形成层年周期的划分及各时期特征 | 第58页 |
4.2 银杏古树的年轮分析 | 第58-59页 |
4.3 小RNA及降解组文库分析 | 第59-60页 |
4.4 不同树龄银杏形成层中关键miRNA及靶基因的功能分析 | 第60-62页 |
总结 | 第62-63页 |
参考文献 | 第63-73页 |
致谢 | 第73-74页 |
在学期间发表的学术论文 | 第74-75页 |