| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-8页 |
| 第一章 绪论 | 第12-36页 |
| 1.1 海带概述 | 第12-18页 |
| 1.1.1 海带分类地位 | 第12-13页 |
| 1.1.2 海带生活史 | 第13-14页 |
| 1.1.3 海带生物学特征 | 第14-15页 |
| 1.1.4 海带生态习性 | 第15-16页 |
| 1.1.5 海带价值 | 第16-18页 |
| 1.2 褐藻酸 | 第18-24页 |
| 1.2.1 褐藻酸结构和特性 | 第18-20页 |
| 1.2.2 褐藻酸来源 | 第20-23页 |
| 1.2.3 褐藻酸应用 | 第23-24页 |
| 1.3 褐藻酸合成研究 | 第24-35页 |
| 1.3.1 褐藻酸合成途径的提出 | 第24-25页 |
| 1.3.2 褐藻酸合成途径的研究现状 | 第25-35页 |
| 1.4 研究目的和意义 | 第35-36页 |
| 第二章 海带褐藻酸合成基因时空转录分析 | 第36-71页 |
| 2.1 材料与方法 | 第36-44页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第36-37页 |
| 2.1.2 实验仪器 | 第37页 |
| 2.1.3 实验试剂 | 第37页 |
| 2.1.4 实验方法 | 第37-44页 |
| 2.2 实验结果 | 第44-68页 |
| 2.2.1 海带总RNA提取 | 第44-45页 |
| 2.2.2 测序评估 | 第45-48页 |
| 2.2.3 比对与基因统计 | 第48-50页 |
| 2.2.4 差异分析 | 第50-68页 |
| 2.3 讨论 | 第68-71页 |
| 第三章 磷酸甘露糖变位酶基因的研究 | 第71-92页 |
| 3.1 实验材料 | 第71-75页 |
| 3.1.1 样品采集 | 第71页 |
| 3.1.2 实验仪器 | 第71-72页 |
| 3.1.3 实验试剂及配制 | 第72-75页 |
| 3.2 实验方法 | 第75-82页 |
| 3.2.1 Sjpmm/pgm1的扩增和序列分析 | 第75-77页 |
| 3.2.2 SjPMM/PGM1的体外表达及纯化 | 第77-79页 |
| 3.2.3 SjPMM/PGM1酶动力学分析 | 第79-81页 |
| 3.2.4 光、温对Sjpmm/pgm1转录的影响 | 第81-82页 |
| 3.3 实验结果 | 第82-90页 |
| 3.3.1 Sjpmm/pgm1基因克隆 | 第82-83页 |
| 3.3.2 序列分析 | 第83-85页 |
| 3.3.3 Sjpmm/pgm1表达载体的构建 | 第85页 |
| 3.3.4 SjPMM/PGM1融合蛋白的表达和纯化 | 第85-86页 |
| 3.3.5 SjPMM/PGM1酶动力学测定 | 第86-89页 |
| 3.3.6 光温对Sjpmm/pgm1转录影响 | 第89-90页 |
| 3.4 讨论 | 第90-92页 |
| 第四章 甘露糖醛酸C5-异构酶基因的研究 | 第92-112页 |
| 4.1 实验材料 | 第92页 |
| 4.2 实验方法 | 第92-98页 |
| 4.2.1 海带MC5E基因信息学分析 | 第92页 |
| 4.2.2 MC5E2基因扩增 | 第92-94页 |
| 4.2.3 表达载体的构建 | 第94-95页 |
| 4.2.4 蛋白的表达与纯化 | 第95-97页 |
| 4.2.5 MC5E酶活性测定 | 第97-98页 |
| 4.3 实验结果 | 第98-110页 |
| 4.3.1 海带MC5E基因家族分析 | 第98-100页 |
| 4.3.2 海带MC5E基因表达趋势分析 | 第100-103页 |
| 4.3.3 海带MC5E2基因序列分析 | 第103-106页 |
| 4.3.4 MC5E2基因的扩增 | 第106-107页 |
| 4.3.5 表达载体的构建 | 第107页 |
| 4.3.6 MC5E2的体外表达与纯化 | 第107-108页 |
| 4.3.7 MC5E2的活性测定 | 第108-110页 |
| 4.4 讨论 | 第110-112页 |
| 第五章 结论与展望 | 第112-114页 |
| 参考文献 | 第114-131页 |
| 致谢 | 第131-132页 |
| 作者简历及攻读学位期间发表的学术论文与研究成果 | 第132页 |