| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-8页 |
| 第一章 绪论 | 第14-30页 |
| 1.1 环境胁迫对水产动物的影响 | 第14-17页 |
| 1.1.1 低氧 | 第14页 |
| 1.1.2 盐度 | 第14-15页 |
| 1.1.3 pH | 第15-16页 |
| 1.1.4 氨氮 | 第16页 |
| 1.1.5 重金属 | 第16-17页 |
| 1.2 环境胁迫下水产动物的新陈代谢策略 | 第17-21页 |
| 1.2.1 适度胁迫的代谢反应：补偿 | 第17-19页 |
| 1.2.2 极端胁迫的代谢反应：保留 | 第19-21页 |
| 1.3 环境胁迫下水产动物的氧化应激反应 | 第21-24页 |
| 1.3.1 ROS的产生和发展 | 第22-23页 |
| 1.3.2 ROS的消除策略 | 第23-24页 |
| 1.4 GSH的生物学功能及对动物肝脏的应用研究 | 第24-27页 |
| 1.4.1 GSH消除ROS | 第24-25页 |
| 1.4.2 GSH消除内源性毒物 | 第25页 |
| 1.4.3 GSH调节细胞生长和死亡 | 第25-26页 |
| 1.4.4 GSH对动物肝脏的应用研究 | 第26-27页 |
| 1.5 本文主要研究内容 | 第27-28页 |
| 1.6 本研究的目的和意义 | 第28-30页 |
| 第二章 逐渐降低或升高pH对凡纳滨对虾生长、渗透调节、消化酶活性、及弧菌抵抗力的影响 | 第30-42页 |
| 2.1 引言 | 第30页 |
| 2.2 材料与方法 | 第30-34页 |
| 2.2.1 实验虾 | 第30-31页 |
| 2.2.2 副溶血性弧菌准备 | 第31页 |
| 2.2.3 逐渐降低pH或逐渐升高pH胁迫的实验设计 | 第31-32页 |
| 2.2.4 虾死亡率、生长性能的测定和取样程序 | 第32页 |
| 2.2.5 鳃的渗透调节基因表达分析 | 第32-33页 |
| 2.2.6 肝胰腺消化酶活性的测定 | 第33页 |
| 2.2.7 虾对副溶血性弧菌的抵抗力 | 第33-34页 |
| 2.2.8 统计分析 | 第34页 |
| 2.3 结果 | 第34-38页 |
| 2.3.1 不同pH条件下虾的死亡率 | 第34-35页 |
| 2.3.2 不同pH条件下虾的生长性能 | 第35页 |
| 2.3.3 不同pH条件下虾的渗透调节基因表达 | 第35-36页 |
| 2.3.4 不同pH条件下虾的消化酶活性 | 第36-37页 |
| 2.3.5 不同pH条件下虾对副溶血弧菌的抵抗力 | 第37-38页 |
| 2.4 讨论 | 第38-40页 |
| 2.5 小结 | 第40-42页 |
| 第三章 凡纳滨对虾的肝胰腺和肠道对逐渐降低或升高pH的氧化应激比较研究 | 第42-54页 |
| 3.1 引言 | 第42-43页 |
| 3.2 材料与方法 | 第43-45页 |
| 3.2.1 实验虾 | 第43页 |
| 3.2.2 逐渐降低pH或逐渐升高pH胁迫的实验设计 | 第43页 |
| 3.2.3 虾取样程序 | 第43页 |
| 3.2.4 肝胰腺和中肠的ROS与MDA含量测定 | 第43-44页 |
| 3.2.5 肝胰腺和中肠的基因表达分析 | 第44页 |
| 3.2.6 肝胰腺和中肠的DNAladder分析 | 第44-45页 |
| 3.2.7 肝胰腺和中肠的的组织结构分析 | 第45页 |
| 3.2.8 统计分析 | 第45页 |
| 3.3 结果 | 第45-50页 |
| 3.3.1 不同pH条件下虾肝胰腺和中肠ROS含量 | 第45页 |
| 3.3.2 不同pH条件下虾肝胰腺和中肠MnSOD基因表达 | 第45-46页 |
| 3.3.3 不同pH条件下虾肝胰腺和中肠GPx基因表达 | 第46-47页 |
| 3.3.4 不同pH条件下虾肝胰腺和中肠GST基因表达 | 第47页 |
| 3.3.5 不同pH条件下虾肝胰腺和中肠Hsp70基因表达 | 第47-48页 |
| 3.3.6 不同pH条件下虾肝胰腺和中肠MDA含量 | 第48-49页 |
| 3.3.7 不同pH条件下虾肝胰腺和中肠的细胞凋亡 | 第49页 |
| 3.3.8 不同pH条件下虾肝胰腺和中肠的组织结构 | 第49-50页 |
| 3.4 讨论 | 第50-52页 |
| 3.5 小结 | 第52-54页 |
| 第四章 循环重/中度低氧胁迫对凡纳滨对虾生长、渗透调节、消化酶活性、及弧菌抵抗力的影响 | 第54-64页 |
| 4.1 引言 | 第54-55页 |
| 4.2 材料与方法 | 第55-57页 |
| 4.2.1 实验虾 | 第55页 |
| 4.2.2 副溶血性弧菌准备 | 第55页 |
| 4.2.3 循环重/中度低氧胁迫的实验设计 | 第55-56页 |
| 4.2.4 虾死亡率、生长性能的测定和取样程序 | 第56页 |
| 4.2.5 鳃的渗透调节基因表达分析 | 第56页 |
| 4.2.6 肝胰腺消化酶活性的测定 | 第56页 |
| 4.2.7 虾对副溶血性弧菌的抵抗力 | 第56-57页 |
| 4.2.8 统计分析 | 第57页 |
| 4.3 结果 | 第57-60页 |
| 4.3.1 循环重/中度低氧条件下虾的死亡率 | 第57页 |
| 4.3.2 循环重/中度低氧条件下虾的生长性能 | 第57-58页 |
| 4.3.3 循环重/中度低氧条件下虾的渗透调节基因表达 | 第58-59页 |
| 4.3.4 循环重/中度低氧条件下虾的消化酶活性 | 第59页 |
| 4.3.5 循环重/中度低氧条件下虾对副溶血弧菌的抵抗力 | 第59-60页 |
| 4.4 讨论 | 第60-62页 |
| 4.5 小结 | 第62-64页 |
| 第五章 凡纳滨对虾的肝胰腺和肠道对循环重/中度低氧的氧化应激比较研究 | 第64-74页 |
| 5.1 引言 | 第64-65页 |
| 5.2 材料与方法 | 第65-67页 |
| 5.2.1 实验虾 | 第65页 |
| 5.2.2 循环重/中度低氧胁迫的实验设计 | 第65页 |
| 5.2.3 虾取样程序 | 第65页 |
| 5.2.4 肝胰腺和中肠的基因表达分析 | 第65-66页 |
| 5.2.5 肝胰腺和中肠的DNAladder分析 | 第66页 |
| 5.2.6 肝胰腺和中肠的的组织结构分析 | 第66页 |
| 5.2.7 统计分析 | 第66-67页 |
| 5.3 结果 | 第67-71页 |
| 5.3.1 循环重/中度低氧条件下虾肝胰腺和中肠HIF-1a基因表达 | 第67页 |
| 5.3.2 循环重/中度低氧条件下虾肝胰腺和中肠MnSOD,GPx,GST和MT基因表达 | 第67-69页 |
| 5.3.3 循环重/中度低氧条件下虾肝胰腺和中肠Hsp70基因表达 | 第69页 |
| 5.3.4 循环重/中度低氧条件下虾肝胰腺和中肠DNAladder分析 | 第69-70页 |
| 5.3.5 循环重/中度低氧条件下虾肝胰腺和中肠组织结构分析 | 第70-71页 |
| 5.4 讨论 | 第71-73页 |
| 5.5 小结 | 第73-74页 |
| 第六章 谷胱甘肽缓解循环重/中度低氧胁迫凡纳滨对虾造成损伤的作用机理 | 第74-94页 |
| 6.1 引言 | 第74-75页 |
| 6.2 材料与方法 | 第75-78页 |
| 6.2.1 实验虾 | 第75页 |
| 6.2.2 补充GSH及循环重/中度低氧胁迫的实验设计 | 第75-76页 |
| 6.2.3 虾死亡率、生长性能的测定和取样程序 | 第76-77页 |
| 6.2.4 肝胰腺氧化指标测定 | 第77页 |
| 6.2.5 RNA分离和cDNA文库构建 | 第77页 |
| 6.2.6 转录组测序,基因组装与注释 | 第77-78页 |
| 6.2.7 肝胰腺的组织结构分析 | 第78页 |
| 6.2.8 统计分析 | 第78页 |
| 6.3 结果 | 第78-89页 |
| 6.3.1 虾的生存和生长性能 | 第78页 |
| 6.3.2 肝胰腺氧化指标分析 | 第78-79页 |
| 6.3.3 转录组测序和组装 | 第79-80页 |
| 6.3.4 功能注释和分类分析 | 第80-82页 |
| 6.3.5 差异表达基因分析 | 第82-84页 |
| 6.3.6 差异表达基因可能涉及的肝胰腺功能 | 第84-89页 |
| 6.3.7 肝胰腺组织结构分析 | 第89页 |
| 6.4 讨论 | 第89-93页 |
| 6.5 小结 | 第93-94页 |
| 第七章 结论与创新点 | 第94-96页 |
| 7.1 主要结论 | 第94-95页 |
| 7.2 创新点 | 第95-96页 |
| 参考文献 | 第96-120页 |
| 致谢 | 第120-121页 |
| 作者简历及攻读博士学位期间发表的学术论文与研究成果 | 第121页 |
