| 摘要 | 第6-7页 |
| ABSTRACT | 第7-8页 |
| 第一章 文献综述 | 第9-17页 |
| 1.1 微生物代谢组学研究进展 | 第9-12页 |
| 1.1.1 代谢组学简介 | 第9-10页 |
| 1.1.2 微生物代谢组学研究 | 第10-11页 |
| 1.1.3 微生物代谢组学样品制备方法 | 第11-12页 |
| 1.2 聚γ-谷氨酸及其合成途径 | 第12-14页 |
| 1.2.1 聚γ-谷氨酸简介 | 第12页 |
| 1.2.2 γ-PGA合成途径 | 第12-14页 |
| 1.3 环境因素方法在生物发酵工程中的研究现状 | 第14-16页 |
| 1.4 本课题的学术意义与应用前景 | 第16-17页 |
| 第二章 地衣芽胞杆菌WX-02代谢组学样品制备 | 第17-27页 |
| 2.1 前言 | 第17页 |
| 2.2 材料与方法 | 第17-19页 |
| 2.2.1 菌株 | 第17页 |
| 2.2.2 培养基 | 第17-18页 |
| 2.2.3 主要仪器 | 第18页 |
| 2.2.4 培养条件 | 第18页 |
| 2.2.5 建立HPLC测定地衣芽胞杆菌WX-02胞内能量代谢物质方法 | 第18-19页 |
| 2.2.6 淬灭方法的优化 | 第19页 |
| 2.2.7 洗涤剂的优化 | 第19页 |
| 2.2.8 建立细胞破碎条件 | 第19页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第19-26页 |
| 2.3.1 确定HPLC方法的相关参数 | 第19-21页 |
| 2.3.2 标准曲线绘制 | 第21页 |
| 2.3.3 精密度试验 | 第21-22页 |
| 2.3.4 回收率试验 | 第22页 |
| 2.3.5 淬灭方法的优化 | 第22-25页 |
| 2.3.6 洗涤剂优化 | 第25页 |
| 2.3.7 压力破碎条件优化 | 第25-26页 |
| 2.4 结论 | 第26-27页 |
| 第三章 环境因素对地衣芽胞杆菌生物合成γ-PGA的影响 | 第27-41页 |
| 3.1 前言 | 第27页 |
| 3.2 材料与方法 | 第27-30页 |
| 3.2.1 菌株 | 第27页 |
| 3.2.2 培养基 | 第27-28页 |
| 3.2.3 主要仪器 | 第28页 |
| 3.2.4 培养条件 | 第28页 |
| 3.2.5 乙醇处理 | 第28页 |
| 3.2.6 冷冲击 | 第28页 |
| 3.2.7 H_2O_2处理 | 第28-29页 |
| 3.2.8 乙酸钠处理 | 第29页 |
| 3.2.9 超声波冲击 | 第29页 |
| 3.2.10 生物量的检测 | 第29页 |
| 3.2.11 葡萄糖含量测定 | 第29页 |
| 3.2.12 丙酮酸含量测定 | 第29页 |
| 3.2.13 γ-PGA的分离纯化 | 第29-30页 |
| 3.2.14 γ-PGA浓度检测 | 第30页 |
| 3.2.15 γ-PGA分子量的检测 | 第30页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第30-40页 |
| 3.3.1 乙醇对地衣芽胞杆菌WX-02生物合成γ-PGA的影响 | 第30-31页 |
| 3.3.2 冷冲击对地衣芽胞杆菌WX-02生物合成γ-PGA的影响 | 第31-33页 |
| 3.3.3 H_2O_2对地衣芽胞杆菌WX-02生物合成γ-PGA的影响 | 第33页 |
| 3.3.4 乙酸钠对γ-PGA发酵的影响 | 第33-36页 |
| 3.3.5 超声波对γ-PGA发酵的影响 | 第36-40页 |
| 3.4 结论 | 第40-41页 |
| 第四章 结论与展望 | 第41-43页 |
| 4.1 结论 | 第41页 |
| 4.2 展望 | 第41-43页 |
| 参考文献 | 第43-49页 |
| 致谢 | 第49-50页 |
| 在读期间发表及待发表的论文 | 第50页 |
