| 摘要 | 第5-8页 |
| ABSTRACT | 第8-11页 |
| 第一章 文献综述 | 第16-31页 |
| 1.1 禾谷缢管蚜概述 | 第16-17页 |
| 1.1.1 禾谷缢管蚜发生及其危害 | 第16页 |
| 1.1.2 禾谷缢管蚜抗药性研究现状 | 第16-17页 |
| 1.2 害虫抗药性机理研究 | 第17-22页 |
| 1.2.1 表皮穿透速率下降 | 第18页 |
| 1.2.2 解毒酶作用增强 | 第18-21页 |
| 1.2.3 靶标敏感性下降 | 第21-22页 |
| 1.3 吡虫啉研究概况 | 第22-24页 |
| 1.3.1 吡虫啉及其作用特点 | 第22-23页 |
| 1.3.2 昆虫对吡虫啉抗药性发生研究概况 | 第23-24页 |
| 1.3.3 吡虫啉与其它农药的交互抗性 | 第24页 |
| 1.4 烟碱型乙酰胆碱受体的研究进展 | 第24-30页 |
| 1.4.1 烟碱型乙酰胆碱受体的基本结构与功能 | 第25-27页 |
| 1.4.2 昆虫烟碱型乙酰胆碱受体的研究进展 | 第27-30页 |
| 1.5 本研究的目的和意义 | 第30-31页 |
| 第二章 禾谷缢管蚜抗吡虫啉品系的筛选及其适合度研究 | 第31-39页 |
| 2.1 材料与方法 | 第31-32页 |
| 2.1.1 材料 | 第31-32页 |
| 2.2 结果与分析 | 第32-37页 |
| 2.2.1 禾谷缢管蚜对吡虫啉抗性的筛选 | 第32-33页 |
| 2.2.2 禾谷缢管蚜吡虫啉抗性品系的相对适合度 | 第33-37页 |
| 2.3 小结与讨论 | 第37-39页 |
| 2.3.1 小结 | 第37页 |
| 2.3.2 讨论 | 第37-39页 |
| 第三章 禾谷缢管蚜抗吡虫啉品系的交互抗性研究 | 第39-43页 |
| 3.1 材料与方法 | 第39-40页 |
| 3.1.1 供试昆虫 | 第39页 |
| 3.1.2 供试农药 | 第39页 |
| 3.1.3 生物测定 | 第39页 |
| 3.1.4 交互抗性测定 | 第39-40页 |
| 3.2 结果与分析 | 第40-41页 |
| 3.3 结论与讨论 | 第41-43页 |
| 3.3.1 小结 | 第41页 |
| 3.3.2 讨论 | 第41-43页 |
| 第四章 禾谷缢管蚜对吡虫啉抗性的生化机制研究 | 第43-50页 |
| 4.1 材料与方法 | 第43-45页 |
| 4.1.1 供试昆虫及饲养 | 第43页 |
| 4.1.2 主要仪器和试剂 | 第43-44页 |
| 4.1.3 增效剂对吡虫啉的增效作用测定 | 第44页 |
| 4.1.4 酶活测定 | 第44-45页 |
| 4.1.5 数据分析 | 第45页 |
| 4.2 结果与分析 | 第45-48页 |
| 4.2.1 增效剂对吡虫啉的增效作用 | 第45-46页 |
| 4.2.2 禾谷缢管蚜抗感品系解毒酶活力分析 | 第46-48页 |
| 4.3 结论与讨论 | 第48-50页 |
| 4.3.1 小结 | 第48页 |
| 4.3.2 讨论 | 第48-50页 |
| 第五章 禾谷缢管蚜烟碱型乙酰胆碱受体基因的克隆和抗性品系突变检测 | 第50-73页 |
| 5.1 材料与方法 | 第50-55页 |
| 5.1.1 供试昆虫 | 第50页 |
| 5.1.2 主要试剂 | 第50-51页 |
| 5.1.3 主要仪器 | 第51页 |
| 5.1.4 总RNA提取 | 第51-52页 |
| 5.1.5 cDNA第一链的合成 | 第52-53页 |
| 5.1.6 引物设计和PCR扩增 | 第53-55页 |
| 5.1.7 PCR产物纯化、克隆和测序 | 第55页 |
| 5.1.8 不同品系中nAChR亚基基因突变检测 | 第55页 |
| 5.1.9 序列分析 | 第55页 |
| 5.2 结果与分析 | 第55-69页 |
| 5.2.1 禾谷缢管蚜烟碱型乙酰胆碱受体基因的克隆与序列分析 | 第55-66页 |
| 5.2.2 禾谷缢管蚜nAChR两个 α 亚基Rpα3 和Rpα5 的选择性剪接 | 第66页 |
| 5.2.3 禾谷缢管蚜nAChR亚基分子系统进化分析 | 第66-69页 |
| 5.2.4 禾谷缢管蚜抗感品系中nAChR亚基基因cDNA全长扩增及序列差异分析 | 第69页 |
| 5.3 结论与讨论 | 第69-73页 |
| 5.3.1 小结 | 第69-70页 |
| 5.3.2 讨论 | 第70-73页 |
| 第六章 禾谷缢管蚜田间种群nAChR β1 亚基胞外区多态性分析 | 第73-80页 |
| 6.1 材料与方法 | 第73-75页 |
| 6.1.1 供试昆虫 | 第73-74页 |
| 6.1.2 主要试剂 | 第74页 |
| 6.1.3 总RNA提取 | 第74页 |
| 6.1.4 cDNA第一链的合成 | 第74页 |
| 6.1.5 禾谷缢管蚜Rpβ1 亚基片段克隆 | 第74-75页 |
| 6.1.6 PCR产物纯化、克隆和测序 | 第75页 |
| 6.1.7 序列分析 | 第75页 |
| 6.2 结果与分析 | 第75-77页 |
| 6.3 结论与讨论 | 第77-80页 |
| 6.3.1 小结 | 第77页 |
| 6.3.2 讨论 | 第77-80页 |
| 第七章 禾谷缢管蚜抗、感品系nAChR基因的相对表达量研究 | 第80-88页 |
| 7.1 材料与方法 | 第80-82页 |
| 7.1.1 供试昆虫 | 第80页 |
| 7.1.2 主要试剂 | 第80页 |
| 7.1.3 主要仪器 | 第80-81页 |
| 7.1.4 禾谷缢管蚜吡虫啉抗性品系和敏感品系RNA提取 | 第81页 |
| 7.1.5 禾谷缢管蚜吡虫啉药剂处理及RNA提取 | 第81页 |
| 7.1.6 荧光定量PCR的引物设计 | 第81页 |
| 7.1.7 实时荧光定量PCR检测禾谷缢管蚜nAChR亚基基因的相对表达量 | 第81页 |
| 7.1.8 数据分析 | 第81-82页 |
| 7.2 结果与分析 | 第82-86页 |
| 7.2.1 禾谷缢管蚜吡虫啉抗感品系中nAChR亚基基因的相对表达量分析 | 第82-83页 |
| 7.2.2 禾谷缢管蚜nAChR亚基基因在吡虫啉诱导不同时间的相对表达量分析 | 第83-86页 |
| 7.3 结论与讨论 | 第86-88页 |
| 7.3.1 小结 | 第86页 |
| 7.3.2 讨论 | 第86-88页 |
| 第八章 禾谷缢管蚜抗、感品系P450基因的相对表达量研究 | 第88-96页 |
| 8.1 材料与方法 | 第88-90页 |
| 8.1.1 供试昆虫 | 第88页 |
| 8.1.2 主要试剂 | 第88页 |
| 8.1.3 主要仪器 | 第88页 |
| 8.1.4 禾谷缢管蚜吡虫啉抗性品系和敏感品系RNA提取 | 第88页 |
| 8.1.5 禾谷缢管蚜吡虫啉药剂处理及RNA提取 | 第88-89页 |
| 8.1.6 实时荧光定量PCR的引物设计 | 第89页 |
| 8.1.7 实时荧光定量PCR检测禾谷缢管蚜P450基因的相对表达量 | 第89-90页 |
| 8.1.8 数据分析 | 第90页 |
| 8.2 结果与分析 | 第90-92页 |
| 8.2.1 禾谷缢管蚜吡虫啉抗、感品系中6个P450基因的相对表达量分析 | 第90页 |
| 8.2.2 禾谷缢管蚜6个P450基因在吡虫啉诱导后不同时间的相对表达量分析 | 第90-92页 |
| 8.3 结论与讨论 | 第92-96页 |
| 8.3.1 小结 | 第92-93页 |
| 8.3.2 讨论 | 第93-96页 |
| 第九章 全文总结与研究展望 | 第96-98页 |
| 9.1 全文主要结论 | 第96-97页 |
| 9.2 下一步工作展望 | 第97-98页 |
| 参考文献 | 第98-116页 |
| 致谢 | 第116-118页 |
| 作者简介 | 第118-119页 |
