| 摘要 | 第3-4页 |
| abstract | 第4-5页 |
| 主要符号对照表 | 第9-11页 |
| 第1章 引言 | 第11-23页 |
| 1.1 心肌缺氧复氧损伤及其能量代谢特征 | 第11-15页 |
| 1.1.1 心肌缺氧复氧损伤发生过程及保护手段 | 第11-12页 |
| 1.1.2 线粒体在心肌缺氧复氧损伤中的地位 | 第12-15页 |
| 1.1.3 尼克酰胺保护心肌缺氧复氧损伤的研究现状 | 第15页 |
| 1.2 代谢组学的研究策略及应用 | 第15-17页 |
| 1.2.1 代谢组学的研究策略 | 第16页 |
| 1.2.2 代谢组学在心血管疾病中的应用 | 第16-17页 |
| 1.2.3 线粒体代谢组学在心肌缺氧复氧研究中具有重要意义 | 第17页 |
| 1.3 线粒体分离及代谢研究状况 | 第17-21页 |
| 1.3.1 线粒体研究方法 | 第17-18页 |
| 1.3.2 亚细胞组分分离方法 | 第18-20页 |
| 1.3.3 线粒体产率与纯度表征方法 | 第20-21页 |
| 1.4 线粒体代谢研究中的不足及需要解决的科学问题 | 第21-22页 |
| 1.5 论文的研究思路与主要内容 | 第22-23页 |
| 第2章 线粒体分离提取评价及优化方法的建立 | 第23-36页 |
| 2.1 研究背景 | 第23页 |
| 2.2 实验部分 | 第23-26页 |
| 2.2.1 试剂与仪器 | 第23-24页 |
| 2.2.2 细胞培养 | 第24-25页 |
| 2.2.3 线粒体提取 | 第25-26页 |
| 2.3 线粒体提取效果评估方法构建 | 第26-31页 |
| 2.3.1 荧光探针选择 | 第26-28页 |
| 2.3.2 荧光探针稳定性 | 第28-29页 |
| 2.3.3 线粒体提取效果评估方法的构建 | 第29-31页 |
| 2.4 线粒体提取方法优化 | 第31-35页 |
| 2.5 本章小结 | 第35-36页 |
| 第3章 线粒体代谢物分析方法研究 | 第36-51页 |
| 3.1 研究背景 | 第36页 |
| 3.2 实验部分 | 第36-38页 |
| 3.2.1 试剂与仪器 | 第36-37页 |
| 3.2.2 细胞培养 | 第37页 |
| 3.2.3 样品前处理方法 | 第37-38页 |
| 3.3 色谱/质谱方法的确定 | 第38-44页 |
| 3.3.1 色谱柱的选择 | 第39-40页 |
| 3.3.2 流动相组成的确定 | 第40-41页 |
| 3.3.3 梯度洗脱条件的确定 | 第41-43页 |
| 3.3.4 质谱条件及液相色谱保留时间 | 第43-44页 |
| 3.4 线粒体及细胞样品代谢物检测 | 第44-45页 |
| 3.5 分析方法的确证 | 第45-50页 |
| 3.5.1 混合标准品的准备 | 第45-46页 |
| 3.5.2 检出限及定量限 | 第46-47页 |
| 3.5.3 标准曲线和线性范围 | 第47-50页 |
| 3.5.4 精密度 | 第50页 |
| 3.6 本章小结 | 第50-51页 |
| 第4章 尼克酰胺保护心肌细胞缺氧复氧损伤机理研究 | 第51-65页 |
| 4.1 研究背景 | 第51页 |
| 4.2 实验部分 | 第51-53页 |
| 4.2.1 试剂与仪器 | 第51-52页 |
| 4.2.2 溶液的配制 | 第52页 |
| 4.2.3 细胞培养 | 第52页 |
| 4.2.4 实验设计及分组 | 第52页 |
| 4.2.5 样品的前处理 | 第52页 |
| 4.2.6 样品的分析 | 第52-53页 |
| 4.3 心肌细胞缺氧复氧损伤模型的建立 | 第53-55页 |
| 4.4 代谢物数据分析 | 第55-59页 |
| 4.5 尼克酰胺保护作用的分子学验证 | 第59-61页 |
| 4.6 尼克酰胺保护心肌细胞缺氧复氧损伤机理 | 第61-63页 |
| 4.7 本章小结 | 第63-65页 |
| 第5章 结论 | 第65-66页 |
| 参考文献 | 第66-71页 |
| 致谢 | 第71-73页 |
| 个人简历、在学期间发表的学术论文与研究成果 | 第73页 |
