| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 1 绪论 | 第12-26页 |
| 1.1 多糖研究概述 | 第12-23页 |
| 1.1.1 多糖的提取纯化 | 第13-17页 |
| 1.1.2 多糖的结构表征 | 第17-18页 |
| 1.1.3 多糖的生物活性 | 第18-21页 |
| 1.1.4 多糖的构效关系 | 第21-23页 |
| 1.2 西洋人参多糖概述 | 第23-24页 |
| 1.2.1 西洋参多糖的提取分离 | 第23-24页 |
| 1.2.2 西洋参多糖结构表征及生物活性 | 第24页 |
| 1.3 本研究的意义及主要内容 | 第24-26页 |
| 1.3.1 研究意义 | 第24-25页 |
| 1.3.2 主要内容 | 第25-26页 |
| 2 多糖的分离纯化 | 第26-36页 |
| 2.1 引言 | 第26页 |
| 2.1.1 材料与设备 | 第26页 |
| 2.2 仪器与设备 | 第26-27页 |
| 2.3 实验方法 | 第27-30页 |
| 2.3.1 西洋参多糖的制备及测定方法 | 第27-28页 |
| 2.3.2 西洋参多糖的脱色 | 第28页 |
| 2.3.3 西洋参多糖的脱蛋白 | 第28-29页 |
| 2.3.4 DEAE Sepharose CL-6B阴离子交换柱层析 | 第29页 |
| 2.3.5 Sepharose CL-6B琼脂糖凝胶柱层析 | 第29-30页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第30-35页 |
| 2.4.1 西洋参多糖含量 | 第30页 |
| 2.4.2 西洋参多糖的脱色 | 第30-32页 |
| 2.4.3 西洋参多糖脱蛋白 | 第32-33页 |
| 2.4.4 DEAE Sepharose CL-6B阴离子交换柱层析 | 第33-34页 |
| 2.4.5 Sepharose CL-6B琼脂糖凝胶柱层析 | 第34-35页 |
| 2.5 本章小结 | 第35-36页 |
| 3 西洋参多糖的结构表征 | 第36-50页 |
| 3.1 引言 | 第36页 |
| 3.2 材料与设备 | 第36-37页 |
| 3.2.1 材料与试剂 | 第36页 |
| 3.2.2 仪器与设备 | 第36-37页 |
| 3.3 实验方法 | 第37-38页 |
| 3.3.1 多糖纯度鉴定及分子量测定 | 第37页 |
| 3.3.2 多糖扫描电镜SEM检测 | 第37页 |
| 3.3.3 多糖IR光谱检测 | 第37页 |
| 3.3.4 多糖GC检测 | 第37-38页 |
| 3.3.5 多糖~1H-NMR光谱检测 | 第38页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第38-48页 |
| 3.4.1 多糖纯度鉴定及分子量测定 | 第38-39页 |
| 3.4.2 多糖扫描电镜SEM分析 | 第39-42页 |
| 3.4.3 多糖单糖组成分析 | 第42-45页 |
| 3.4.4 多糖红外光谱分析 | 第45-47页 |
| 3.4.5 多糖核磁共振分析 | 第47-48页 |
| 3.5 本章小结 | 第48-50页 |
| 4 西洋参多糖增强免疫力功能研究 | 第50-56页 |
| 4.1 引言 | 第50页 |
| 4.2 材料与设备 | 第50-51页 |
| 4.2.1 材料与试剂 | 第50页 |
| 4.2.2 仪器与设备 | 第50-51页 |
| 4.3 实验方法 | 第51-53页 |
| 4.3.1 小鼠造模、分组与给药 | 第51页 |
| 4.3.2 免疫器官脏器指数的测定 | 第51页 |
| 4.3.3 ConA诱导的小鼠脾淋巴细胞转化实验 | 第51-52页 |
| 4.3.4 抗体生成细胞检测 | 第52页 |
| 4.3.5 小鼠腹腔巨噬细胞吞噬鸡红细胞实验 | 第52-53页 |
| 4.3.6 数据处理 | 第53页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第53-55页 |
| 4.4.1 西洋参多糖对免疫抑制小鼠免疫器官指数的影响 | 第53-54页 |
| 4.4.2 ConA诱导的小鼠脾淋巴细胞转化实验 | 第54页 |
| 4.4.3 西洋参多糖对免疫抑制小鼠抗体生成细胞数的影响 | 第54-55页 |
| 4.4.4 西洋参多糖对免疫抑制小鼠腹腔巨噬细胞吞噬功能的影响 | 第55页 |
| 4.5 本章小结 | 第55-56页 |
| 结论 | 第56-58页 |
| 参考文献 | 第58-65页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第65-66页 |
| 致谢 | 第66页 |
