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高效氯氰菊酯降解菌的筛选及其降解酶特性研究

摘要第4-5页
Abstract第5-6页
第一章 文献综述第11-19页
    1.1 化学农药及农药残留污染第11-13页
        1.1.1 化学农药及农药残留第11-12页
        1.1.2 农药残留的危害第12页
        1.1.3 农药残留的现状第12-13页
        1.1.4 化学农药的不可替代性第13页
    1.2 拟除虫菊酯农药第13-16页
        1.2.1 拟除虫菊酯简介第13页
        1.2.2 拟除虫菊酯特性第13-15页
        1.2.3 拟除虫菊酯残留问题第15-16页
    1.3 微生物对农药残留的降解第16-18页
        1.3.1 农药残留的降解方式第16页
        1.3.2 农药微生物降解的研究第16页
        1.3.3 拟除虫菊酯农药微生物降解的研究第16-18页
    1.4 降解酶对高效氯氰菊酯的降解第18页
    1.5 本研究的目的及意义第18-19页
第二章 高效氯氰菊酯降解菌的筛选、分离与鉴定第19-31页
    2.1 材料与设备第19-21页
        2.1.1 土壤样品采集第19页
        2.1.2 实验中所用培养基、试剂以及仪器第19-21页
    2.2 方法第21-24页
        2.2.1 筛选方法第21-22页
            2.2.1.1 利用液体富集培养筛选菌种第21页
            2.2.1.2 采用极限浓度培养法筛选菌种第21-22页
            2.2.1.3 采用多平板联用法筛选菌种第22页
        2.2.2 高效氯氰菊酯含量的测定第22-23页
            2.2.2.1 紫外分光法测定高效氯氰菊酯含量第22页
            2.2.2.2 回收率及变异系数的测定第22-23页
            2.2.2.3 降解率的测定第23页
        2.2.3 菌种的鉴定第23-24页
            2.2.3.1 16S rDNA鉴定第23-24页
            2.2.3.2 菌落形态及菌种生理生化特性的测定第24页
            2.2.3.3 Sherlock MIS法全自动微生物鉴定第24页
    2.3 结果与分析第24-30页
        2.3.1 紫外分光法测定高效氯氰菊酯含量第24-26页
            2.3.1.1 特征吸收峰的确定第24-25页
            2.3.1.2 标准曲线的绘制第25-26页
            2.3.1.3 回收率及变异系数的计算第26页
        2.3.2 高效氯氰菊酯降解菌的分离和筛选第26-27页
        2.3.3 降解菌DL-4的鉴定第27-30页
            2.3.3.1 16SrDNA鉴定第27页
            2.3.3.2 生理生化鉴定第27-28页
            2.3.3.3 Sherlock MIS法全自动微生物鉴定第28-30页
    2.4 结论第30-31页
第三章 高效氯氰菊酯降解菌DL-4降解特性研究第31-41页
    3.1 材料第31-32页
        3.1.1 菌种第31页
        3.1.2 实验所用培养基、试剂以及仪器第31-32页
    3.2 方法第32-34页
        3.2.1 菌种生长的测定第32页
        3.2.2 降解率的测定第32页
        3.2.3 各种因素对菌种生长及降解能力的影响第32-34页
            3.2.3.1 额外添加碳源对菌种降解能力和生长状况的影响第32页
            3.2.3.2 氮源对菌种降解能力和生长状况的影响第32-33页
            3.2.3.3 pH对菌种降解能力和生长状况的影响第33页
            3.2.3.4 温度对菌种降解能力和生长状况的影响第33页
            3.2.3.5 底物浓度对菌种降解能力和生长状况的影响第33页
            3.2.3.6 通气量对菌种降解能力以及生长状况的影响第33页
            3.2.3.7 菌种的降解谱第33页
            3.2.3.8 接种量对菌种降解能力以及生长状况的影响第33-34页
    3.3 结果与分析第34-40页
        3.3.1 菌株DL-4生长及降解曲线第34页
        3.3.2 各种因素对菌种生长及降解的影响第34-40页
            3.3.2.1 额外添加碳源对菌种降解能力和生长状况的影响第34-36页
            3.3.2.2 氮源对菌种降解能力和生长状况的影响第36页
            3.3.2.3 pH对菌种降解能力和生长状况的影响第36页
            3.3.2.4 温度对菌种降解能力和生长状况的影响第36-38页
            3.3.2.5 底物浓度对菌种降解能力和生长状况的影响第38页
            3.3.2.6 通气量对菌种降解能力以及生长状况的影响第38页
            3.3.2.7 不同接种量对菌种降解能力以及生长状况的影响第38-40页
            3.3.2.8 菌种的降解谱第40页
    3.4 结论第40-41页
第四章 高效氯氰菊酯降解酶的特性初步研究第41-50页
    4.1 材料与方法第41-44页
        4.1.1 菌种第41页
        4.1.2 实验试剂及仪器第41-42页
        4.1.3 粗酶液的制备第42页
        4.1.4 酶反应曲线的测定第42-43页
        4.1.5 酶的定域实验第43页
        4.1.6 温度对酶活力的影响第43页
        4.1.7 酶对温度稳定性第43页
        4.1.8 pH对酶活力的影响第43页
        4.1.9 酶对pH的稳定性第43-44页
        4.1.10 金属离子对酶反应的影响第44页
        4.1.11 底物浓度对酶反应的影响第44页
    4.2 结果与分析第44-49页
        4.2.1 酶反应曲线的测定第44-45页
        4.2.2 酶定域实验第45页
        4.2.3 温度对酶活力的影响第45-46页
        4.2.4 酶对温度的稳定性第46页
        4.2.5 pH对酶活力的影响第46-47页
        4.2.6 酶对pH的稳定性第47-48页
        4.2.7 金属离子对酶活力的影响第48-49页
        4.2.8 底物浓度对酶活力的影响第49页
    4.3 结论第49-50页
第五章 结论第50-51页
参考文献第51-54页
致谢第54页

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