| 前言 | 第4-5页 |
| 中文摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 英文缩略词 | 第12-14页 |
| 第一章 文献综述 | 第14-27页 |
| 1.1 神经轴突生长抑制因子及其受体复合物研究进展 | 第14-17页 |
| 1.1.1 轴突生长抑制因子 | 第14-16页 |
| 1.1.2 相关抑制因子受体复合物研究进展 | 第16-17页 |
| 1.1.3 改善局部微环境的治疗手段 | 第17页 |
| 1.2 影响中枢神经元内源性再生能力的因素 | 第17-27页 |
| 1.2.1 生长调控机制与神经再生 | 第18-19页 |
| 1.2.2 mTOR 信号通路 | 第19-22页 |
| 1.2.3 CD44 的研究进展 | 第22-27页 |
| 第二章 材料与方法 | 第27-38页 |
| 2.1 实验试剂 | 第27-28页 |
| 2.2 实验仪器 | 第28-29页 |
| 2.3 实验细胞 | 第29页 |
| 2.4 实验试剂配制 | 第29-31页 |
| 2.5 实验方法 | 第31-38页 |
| 2.5.1 神经细胞模型的建立 | 第31-32页 |
| 2.5.2 用 RT-PCR 技术及免疫组织化学方法检测诱导细胞的分化程度 | 第32-34页 |
| 2.5.3 通过 RNA 干扰技术使 PTEN 表达下调 | 第34-35页 |
| 2.5.4 Western blot 检测干扰 36h 后 mTOR，Ps6K 蛋白的表达水平 | 第35-36页 |
| 2.5.5 RT-PCR 检测 CD44 及 TUBB3 转录水平 | 第36页 |
| 2.5.6 统计学处理与图像的分析，轴突长度的测量 | 第36-38页 |
| 第三章 实验结果 | 第38-46页 |
| 3.1 全反式维甲酸（RTRA）诱导 SY5Y 细胞分化 | 第38页 |
| 3.2 诱导细胞分化程度的鉴定 | 第38-39页 |
| 3.3 应用 RNAi 技术使 PTEN 表达下调并检测其转录水平 | 第39-40页 |
| 3.4 Western blot 技术检测 PTEN 基因下调后，mTOR 蛋白，Ps6K 蛋白表达水平 | 第40-41页 |
| 3.5 免疫组织化学方法检测 Ps6K 蛋白表达水平 | 第41-42页 |
| 3.6 PTEN 抑制后，mTOR 通路激活对 SY5Y 细胞突起长度的影响 | 第42-43页 |
| 3.7 检测各实验组 CD44 转录水平 | 第43页 |
| 3.8 检测各实验组 TUBB3 转录水平 | 第43-44页 |
| 3.9 共同干扰实验 | 第44-46页 |
| 第四章 讨论 | 第46-50页 |
| 第五章 结论 | 第50-51页 |
| 参考文献 | 第51-57页 |
| 作者简介及在学期间所取得的科研成果 | 第57-58页 |
| 致谢 | 第58页 |
