| 摘要 | 第9-11页 |
| ABSTRACT | 第11-13页 |
| 缩略语表 | 第14-16页 |
| 1 文献综述 | 第16-34页 |
| 1.1 植物硼营养概述 | 第16-20页 |
| 1.1.1 硼的生理功能 | 第16页 |
| 1.1.2 土壤与植物体硼的浓度和分布 | 第16-17页 |
| 1.1.3 植物的缺硼症状 | 第17-18页 |
| 1.1.4 植物硼高效的生理与分子机制 | 第18-20页 |
| 1.2 硼对植物细胞壁结构和力学性能的影响 | 第20-24页 |
| 1.3 低硼胁迫对植物激素信号的影响 | 第24-27页 |
| 1.3.1 低硼胁迫对生长素的影响 | 第25-26页 |
| 1.3.2 低硼胁迫对其它植物激素的影响 | 第26-27页 |
| 1.4 低硼胁迫对植物活性氧信号的影响 | 第27-28页 |
| 1.5 植物钙、活性氧、激素信号的互作 | 第28-30页 |
| 1.5.1 钙与活性氧的互作 | 第28-29页 |
| 1.5.2 激素与活性氧的互作 | 第29-30页 |
| 1.5.3 激素与钙的互作 | 第30页 |
| 1.6 植物细胞培养研究进展 | 第30-34页 |
| 2 课题研究的背景、内容和技术路线 | 第34-36页 |
| 2.1 研究背景 | 第34页 |
| 2.2 研究内容 | 第34-35页 |
| 2.3 技术路线 | 第35-36页 |
| 3 果胶介导的细胞壁机械特性与甘蓝型油菜低硼敏感性的关系 | 第36-68页 |
| 3.1 引言 | 第36页 |
| 3.2 材料与方法 | 第36-44页 |
| 3.2.1 试验材料 | 第36页 |
| 3.2.2 悬浮细胞体系的建立 | 第36-38页 |
| 3.2.3 材料培养及硼浓度处理 | 第38-39页 |
| 3.2.4 细胞活性的测定 | 第39页 |
| 3.2.5 细胞超微结构的观察 | 第39-40页 |
| 3.2.6 细胞壁的提取与分级 | 第40页 |
| 3.2.7 原子力显微镜（AFM）测定细胞表面形貌及力学性能 | 第40-41页 |
| 3.2.8 根系扫描与根系细胞壁弱化的检测 | 第41页 |
| 3.2.9 原生质体培养与细胞壁再生能力的鉴定 | 第41-42页 |
| 3.2.10 果胶的提取与细胞壁组分中糖醛酸含量的测定 | 第42页 |
| 3.2.11 RG-II单体及二聚体的测定 | 第42页 |
| 3.2.12 细胞壁及其组分的傅里叶变换红外光谱（FTIR）的测定 | 第42页 |
| 3.2.13 高通量数字基因表达谱测序 | 第42-43页 |
| 3.2.14 总RNA的提取及逆转录 | 第43页 |
| 3.2.15 基因引物设计及实时定量表达（qRT-PCR）分析 | 第43-44页 |
| 3.2.16 数据分析 | 第44页 |
| 3.3 结果与分析 | 第44-64页 |
| 3.3.1 硼对油菜悬浮细胞生长的影响 | 第44-46页 |
| 3.3.2 硼对油菜悬浮细胞显微形态的影响 | 第46-47页 |
| 3.3.3 硼对油菜细胞壁力学性能的影响 | 第47-52页 |
| 3.3.4 硼对油菜原生质体细胞壁再生的影响 | 第52-54页 |
| 3.3.5 硼对果胶浓度及RG-II单体与二聚体比例的影响 | 第54-55页 |
| 3.3.6 硼高效和硼低效基因型果胶合成相关基因表达的差异 | 第55-64页 |
| 3.4 讨论 | 第64-68页 |
| 3.4.1 低硼导致细胞壁力学性能的弱化促使细胞破裂 | 第64页 |
| 3.4.2 细胞壁果胶含量的差异与基因型间缺硼敏感性的关系 | 第64-66页 |
| 3.4.3 果胶RG-II的二聚化程度与细胞壁的力学性能 | 第66页 |
| 3.4.4 果胶响应低硼胁迫与调控细胞壁强度的模型 | 第66-68页 |
| 4 甘蓝型油菜硼高效和硼低效基因型响应低硼胁迫的激素变化 | 第68-90页 |
| 4.1 引言 | 第68页 |
| 4.2 材料与方法 | 第68-72页 |
| 4.2.1 试验材料 | 第68-69页 |
| 4.2.2 材料培养及硼处理 | 第69页 |
| 4.2.3 根系扫描，生物量与硼浓度的测定 | 第69页 |
| 4.2.4 高通量数字基因表达谱测序 | 第69-70页 |
| 4.2.5 生长素、茉莉酸、脱落酸及相关前体物质或者衍生物的提取和测定 | 第70页 |
| 4.2.6 总RNA的提取及逆转录 | 第70页 |
| 4.2.7 基因引物设计及实时定量表达（qRT-PCR）分析 | 第70-71页 |
| 4.2.8 显微观察分析 | 第71页 |
| 4.2.9 数据分析 | 第71-72页 |
| 4.3 结果与分析 | 第72-87页 |
| 4.3.1 长期低硼胁迫对生物量及硼效率相关性状的影响 | 第72-73页 |
| 4.3.2 激素相关基因响应低硼胁迫时的数字基因表达谱分析 | 第73-75页 |
| 4.3.3 硼对生长素浓度及相关基因表达的影响 | 第75-78页 |
| 4.3.4 拟南芥生长素相关转基因材料对低硼的响应 | 第78-80页 |
| 4.3.5 低硼胁迫下外源添加生长素对甘蓝型油菜生长的影响 | 第80-82页 |
| 4.3.6 硼对茉莉酸浓度及相关基因表达的影响 | 第82-85页 |
| 4.3.7 硼对脱落酸浓度及相关基因表达的影响 | 第85-87页 |
| 4.4 讨论 | 第87-90页 |
| 4.4.1 低硼胁迫降低生长素的浓度从而影响腋芽与根系的生长 | 第87-88页 |
| 4.4.2 茉莉酸对低硼胁迫的响应 | 第88-89页 |
| 4.4.3 脱落酸对低硼胁迫的响应 | 第89-90页 |
| 5 活性氧与钙离子参与低硼诱导的细胞死亡 | 第90-112页 |
| 5.1 引言 | 第90页 |
| 5.2 材料与方法 | 第90-94页 |
| 5.2.1 试验材料 | 第90页 |
| 5.2.2 材料培养及硼处理 | 第90-91页 |
| 5.2.3 细胞活性的测定 | 第91页 |
| 5.2.4 根系扫描与硼浓度的测定 | 第91页 |
| 5.2.5 离子渗漏的测定 | 第91页 |
| 5.2.6 组织化学染色 | 第91-92页 |
| 5.2.7 MDA,O_2~-和H_2O_2浓度测定 | 第92页 |
| 5.2.8 O_2~-和H_2O_2细胞染色 | 第92页 |
| 5.2.9 RNA的提取及逆转录 | 第92页 |
| 5.2.10 基因引物设计及实时定量表达（qRT-PCR）分析 | 第92-93页 |
| 5.2.11 K~+和Ca~(2+)流的测定 | 第93-94页 |
| 5.2.12 抗氧化酶活性的测定 | 第94页 |
| 5.2.13 活性氧清除剂以及钙离子通道抑制剂的前处理 | 第94页 |
| 5.2.14 数据分析 | 第94页 |
| 5.3 结果与分析 | 第94-109页 |
| 5.3.1 硼对植株根系生长及细胞活性的影响 | 第94-96页 |
| 5.3.2 低硼胁迫下基因型间硼浓度及硼吸收相关基因的表达 | 第96-97页 |
| 5.3.3 硼对主根质膜稳定性的影响 | 第97-98页 |
| 5.3.4 低硼胁迫诱导活性氧爆发及相关基因的表达 | 第98-102页 |
| 5.3.5 低硼胁迫引起的离子流变化 | 第102-104页 |
| 5.3.6 钙离子作用于ROS的上游 | 第104-105页 |
| 5.3.7 低硼胁迫对抗氧化酶活性的影响 | 第105-107页 |
| 5.3.8 超氧阴离子特异清除剂缓解缺硼时根系和悬浮细胞的细胞死亡 | 第107-109页 |
| 5.4 讨论 | 第109-112页 |
| 6 全文总结与展望 | 第112-114页 |
| 6.1 研究总结 | 第112页 |
| 6.2 本研究主要创新点 | 第112-113页 |
| 6.3 本研究不足之处 | 第113页 |
| 6.4 研究展望 | 第113-114页 |
| 参考文献 | 第114-144页 |
| 致谢 | 第144-146页 |
| 作者简介 | 第146-148页 |
