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Mipu1对巨噬细胞泡沫化的影响

摘要第4-5页
Abstract第5页
第1章 绪论第11-13页
第2章 实验材料第13-17页
    2.1 主要试剂和耗材第13-14页
    2.2 主要仪器设备第14页
    2.3 细胞株第14-15页
    2.4 数据处理和分析第15-17页
第3章 实验方法第17-27页
    3.1 生物信息学分析第17页
    3.2 常用液体的配制第17页
    3.3 动物模型制备第17-18页
    3.4 血脂水平的检测第18页
    3.5 油红O染色第18页
    3.6 动脉粥样硬化损害分析第18页
    3.7 细胞培养第18-19页
        3.7.1 细胞复苏第18页
        3.7.2 细胞传代第18-19页
        3.7.3 细胞冻存第19页
    3.8 Mipu1表达质粒和干扰质粒的转化和扩增第19-20页
        3.8.1 溶液的配制第19-20页
        3.8.2 受体菌的培养第20页
        3.8.3 感受态细胞的制备(CaCl_2法)第20页
        3.8.4 质粒的转化第20页
    3.9 质粒的提取第20-21页
    3.10 Western Blot检测第21-25页
        3.10.1 蛋白质提取第21-22页
        3.10.2 BCA蛋白定量第22-23页
        3.10.3 Western Blot第23-25页
    3.11 脂质聚积的检测第25页
    3.12 实验分组第25-27页
第4章 实验结果第27-45页
    4.1 Mipu1的生物信息学分析第27-33页
        4.1.1 核酸序列分析第27-29页
        4.1.2 Mipu1的氨基酸序列第29-30页
        4.1.3 Mipu1二级结构第30-31页
        4.1.4 Mipu1三级结构第31页
        4.1.5 Mipu1功能预测第31-32页
        4.1.6 启动子区含Mipu1结合位点的清道夫受体第32页
        4.1.7 改变Mipu1表达水平对清道夫受体mRNA表达的影响第32-33页
    4.2 Mipu1在AS新西兰兔主动脉中的表达情况第33-36页
        4.2.1 高脂喂养对新西兰兔血脂水平的影响第33-34页
        4.2.2 高脂喂养促使新西兰兔主动脉AS斑块的形成第34页
        4.2.3 高脂喂养对新西兰兔主动脉Mipu1和CD36表达的影响第34-36页
    4.3 oxLDL处理RAW264.7 细胞对Mipu1和CD36表达的影响第36-39页
        4.3.1 不同浓度oxLDL处理RAW264.7细胞后Mipu1和CD36的表达第36-37页
        4.3.2 75mg/L oxLDL处理RAW264.7细胞不同时间后Mipu1和CD36的表达第37-39页
    4.4 Mipu1过表达抑制oxLDL诱导的巨噬细胞脂质聚积第39-41页
        4.4.1 转染Mipu1对RAW264.7细胞Mipu1表达的影响第39页
        4.4.2 过表达Mipu1对RAW264.7细胞内胆固醇含量的影响第39-40页
        4.4.3 过表达Mipu1对RAW264.7细胞脂质摄取的影第40页
        4.4.4 油红O染色观察过表达Mipu1对RAW264.7 细胞内脂滴的影响第40-41页
    4.5 Mipu1过表达对oxLDL处理的巨噬细胞ABCA1,ABCG1,SR-B1及CD36表达的影响第41-45页
        4.5.1 过表达Mipu1对RAW264.7细胞ABCA1 mRNA表达的影响第41-42页
        4.5.2 过表达Mipu1对RAW264.7细胞ABCG1 mRNA表达的影响第42页
        4.5.3 过表达Mipu1对RAW264.7细胞SR-B1 mRNA表达的影响第42-43页
        4.5.4 过表达Mipu1对RAW264.7细胞CD36表达的影响第43-45页
第5章 讨论第45-47页
第6章 结论第47-49页
参考文献第49-52页
综述第52-65页
    参考文献第60-65页
攻读学位期间的科研成果第65-67页
致谢第67-69页
附录第69页

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