| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 1 前言 | 第10-31页 |
| 1.1 介孔材料 | 第10-20页 |
| 1.1.1 介孔材料的概述 | 第10-11页 |
| 1.1.2 介孔材料的分类 | 第11-12页 |
| 1.1.3 介孔二氧化钛 | 第12-16页 |
| 1.1.3.1 二氧化钛的晶体结构 | 第12-13页 |
| 1.1.3.2 介孔二氧化钛的合成方法 | 第13-16页 |
| 1.1.4 介孔二氧化钛的光催化原理 | 第16-18页 |
| 1.1.5 介孔二氧化钛的应用 | 第18-20页 |
| 1.2 DNA生物传感器 | 第20-26页 |
| 1.2.1 茎环结构的DNA | 第21-22页 |
| 1.2.2 DNA适体 | 第22-24页 |
| 1.2.3 用于信号放大的单链DNA | 第24-25页 |
| 1.2.4 DNA双螺旋 | 第25页 |
| 1.2.5 DNA传感器的应用前景 | 第25-26页 |
| 1.3 表面增强拉曼散射光谱 | 第26-30页 |
| 1.3.1 表面增强拉曼光谱概述 | 第26页 |
| 1.3.2 表面增强拉曼光谱原理 | 第26-27页 |
| 1.3.3 表面增强拉曼光谱标记物 | 第27-28页 |
| 1.3.4 表面增强拉曼光谱在生物分析中的应用 | 第28-30页 |
| 1.3.4.1 通过表面增强拉曼光谱检测DNA/RNA | 第28-29页 |
| 1.3.4.2 表面增强拉曼光谱在免疫检测中的应用 | 第29页 |
| 1.3.4.3 表面增强拉曼光谱在检测蛋白质定性方面的应用 | 第29-30页 |
| 1.4 本论文的研究内容及意义 | 第30-31页 |
| 2 基于介孔二氧化钛的新型拉曼生物传感器的研制 | 第31-44页 |
| 2.1 引言 | 第31页 |
| 2.2 实验部分 | 第31-34页 |
| 2.2.1 试剂和仪器 | 第31-32页 |
| 2.2.1.1 试剂 | 第31-32页 |
| 2.2.1.2 仪器 | 第32页 |
| 2.2.2 金纳米颗粒的制备 | 第32-33页 |
| 2.2.3 介孔二氧化钛的制备 | 第33页 |
| 2.2.4 介孔二氧化钛表面的氨基修饰 | 第33页 |
| 2.2.5 拉曼条码的制备 | 第33-34页 |
| 2.2.6 DNA修饰的磁性微球的制备 | 第34页 |
| 2.2.7 靶DNA的检测 | 第34页 |
| 2.3 实验结果与讨论 | 第34-43页 |
| 2.3.1 实验原理 | 第34-35页 |
| 2.3.2 拉曼标记物的电镜表征 | 第35页 |
| 2.3.3 纳米介孔TiO_2的XRD表征 | 第35-36页 |
| 2.3.4 N_2吸附-脱附实验表征 | 第36-37页 |
| 2.3.5 标记物的拉曼表征 | 第37-38页 |
| 2.3.6 拉曼标记物的紫外表征 | 第38-39页 |
| 2.3.7 实验的可行性研究 | 第39页 |
| 2.3.8 修饰磁珠的DNA浓度优化 | 第39-40页 |
| 2.3.9 制备条码所用的DNA浓度优化 | 第40-41页 |
| 2.3.10 选择性实验 | 第41-42页 |
| 2.3.11 靶DNA的线性检测 | 第42-43页 |
| 2.4 本章小结 | 第43-44页 |
| 3 基于酶循环放大SERS检测DNA以及Ramos细胞的研究 | 第44-56页 |
| 3.1 前言 | 第44页 |
| 3.2 实验部分 | 第44-47页 |
| 3.2.1 试剂与仪器 | 第44-46页 |
| 3.2.1.1 试剂 | 第44-45页 |
| 3.2.1.2 仪器设备 | 第45-46页 |
| 3.2.2 实验方法 | 第46-47页 |
| 3.2.2.1 金纳米颗粒的制备 | 第46页 |
| 3.2.2.2 氨基修饰的介孔二氧化钛的制备 | 第46-47页 |
| 3.2.2.3 DNA修饰的磁性微球的制备 | 第47页 |
| 3.2.2.4 条码的制备 | 第47页 |
| 3.2.2.5 工具酶循环放大 | 第47页 |
| 3.2.2.6 目标分子的检测 | 第47页 |
| 3.3 结果分析 | 第47-55页 |
| 3.3.1 实验原理 | 第47-49页 |
| 3.3.2 凝胶电泳实验 | 第49-50页 |
| 3.3.3 条码的透射电镜表征 | 第50页 |
| 3.3.4 聚合酶用量的优化 | 第50-51页 |
| 3.3.5 剪切酶用量的优化 | 第51-52页 |
| 3.3.6 温度优化 | 第52页 |
| 3.3.7 反应时间优化 | 第52-53页 |
| 3.3.8 DNA工作曲线 | 第53-54页 |
| 3.3.9 检测Ramos细胞的工作曲线 | 第54-55页 |
| 3.3.10 Ramos细胞的选择性研究 | 第55页 |
| 3.4 本章小结 | 第55-56页 |
| 4 基于DNA自组装放大信号检测多种生物分子的研究 | 第56-71页 |
| 4.1 前言 | 第56-57页 |
| 4.2 | 第57-59页 |
| 4.2.1 试剂和仪器 | 第57-58页 |
| 4.2.1.1 试剂 | 第57-58页 |
| 4.2.1.2 仪器设备 | 第58页 |
| 4.2.2 实验方法 | 第58-59页 |
| 4.2.2.1 金纳米颗粒的制备 | 第58页 |
| 4.2.2.2 氨基修饰的介孔二氧化钛的制备 | 第58-59页 |
| 4.2.2.3 DNA修饰的磁性微球的制备 | 第59页 |
| 4.2.2.4 条码的制备 | 第59页 |
| 4.2.2.5 目标分子的检测 | 第59页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第59-70页 |
| 4.3.1 实验原理 | 第59-61页 |
| 4.3.2 拉曼标记物的透射电镜表征 | 第61-62页 |
| 4.3.3 可行性实验 | 第62页 |
| 4.3.4 修饰磁珠的DNA浓度的优化 | 第62-63页 |
| 4.3.5 修饰金纳米粒子的DNA的比例的优化 | 第63-64页 |
| 4.3.6 反应时间的优化 | 第64页 |
| 4.3.7 未团聚拉曼标记物检测凝血酶 | 第64-65页 |
| 4.3.8 团聚拉曼标记物检测凝血酶 | 第65-66页 |
| 4.3.9 未团聚拉曼标记物检测靶DNA | 第66-67页 |
| 4.3.10 团聚的拉曼标记物检测靶DNA | 第67-68页 |
| 4.3.11 未团聚拉曼标记物检测Ramos细胞 | 第68页 |
| 4.3.12 团聚拉曼标记物检测Ramos细胞 | 第68-69页 |
| 4.3.13 团聚拉曼标记物检测Ramos细胞选择性研究 | 第69-70页 |
| 4.4 本章小结 | 第70-71页 |
| 结论 | 第71-72页 |
| 参考文献 | 第72-78页 |
| 致谢 | 第78-79页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第79-80页 |
