| 中文摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 第一章 文献综述及选题指导思想 | 第11-39页 |
| 1.1 手性药物 | 第11-12页 |
| 1.2 手性化合物的拆分方法 | 第12-22页 |
| 1.2.1 不对称合成法 | 第12页 |
| 1.2.2 动力学拆分法 | 第12-13页 |
| 1.2.3 液液萃取法 | 第13-14页 |
| 1.2.4 膜拆分法 | 第14页 |
| 1.2.5 结晶拆分法 | 第14-15页 |
| 1.2.6 色谱法 | 第15-17页 |
| 1.2.7 毛细管电泳法 | 第17页 |
| 1.2.8 生物催化拆分法 | 第17-22页 |
| 1.3 磁性材料用于固定化酶的研究进展 | 第22-27页 |
| 1.3.1 磁性材料的制备方法 | 第22-23页 |
| 1.3.2 固定化酶的方法 | 第23-24页 |
| 1.3.3 磁性无机材料用于固定化酶 | 第24-25页 |
| 1.3.4 磁性高分子材料用于固定化酶 | 第25-27页 |
| 1.4 固定化酶用于手性药物拆分的研究 | 第27-28页 |
| 1.4.1 固定化酶的特异识别拆分手性药物 | 第27页 |
| 1.4.2 固定化酶的催化拆分手性药物 | 第27-28页 |
| 1.5 选题指导思想及研究意义 | 第28-30页 |
| 参考文献 | 第30-39页 |
| 第二章 溶剂热法制备磁性中空和花瓣纳米微球及其用于固定化脂肪酶的研究 | 第39-55页 |
| 2.1 引言 | 第39-40页 |
| 2.2 实验部分 | 第40-42页 |
| 2.2.1 原料及实验仪器 | 第40-41页 |
| 2.2.2 磁性空心和花瓣纳米微球的制备 | 第41页 |
| 2.2.3 磁性空心和花瓣材料的功能化改性 | 第41页 |
| 2.2.4 空心和花瓣磁性纳米微球固定化酶的制备 | 第41-42页 |
| 2.2.5 pH和催化温度对自由酶和固定化酶活力的影响 | 第42页 |
| 2.2.6 自由酶和固定化酶的热稳定性的影响 | 第42页 |
| 2.2.7 固定化酶的重复使用次数的影响 | 第42页 |
| 2.3 实验结果 | 第42-50页 |
| 2.3.1 表面活性剂加入量对形貌的影响 | 第42-44页 |
| 2.3.2 尿素加入量对形貌的影响 | 第44-45页 |
| 2.3.3 反应时间对形貌的影响 | 第45页 |
| 2.3.4 空心和花瓣材料的形成机理 | 第45-46页 |
| 2.3.5 空心和花瓣磁性材料的表征 | 第46-49页 |
| 2.3.6 空心和花瓣材料固定化酶的结果 | 第49页 |
| 2.3.7 空心和花瓣材料固定化酶的性质的研究 | 第49-50页 |
| 2.4 小结 | 第50-52页 |
| 参考文献 | 第52-55页 |
| 第三章 磁性载体Fe_3O_4@壳聚糖/SBA-15的制备及其固定化脂肪酶研究 | 第55-70页 |
| 3.1 引言 | 第55-56页 |
| 3.2 实验部分 | 第56-59页 |
| 3.2.1 原料及实验仪器 | 第56-57页 |
| 3.2.2 SBA-15的制备及功能化 | 第57页 |
| 3.2.3 Fe_3O_4@聚糖/SBA-15的制备 | 第57-58页 |
| 3.2.4 Fe_3O_4@CS和FeSBA固定化酶的制备 | 第58-59页 |
| 3.2.5 pH和催化温度对自由酶和固定化酶活力的影响 | 第59页 |
| 3.2.6 自由酶和固定化酶的热稳定性的研究 | 第59页 |
| 3.2.7 固定化酶的重复使用性能研究 | 第59页 |
| 3.3 实验结果 | 第59-66页 |
| 3.3.1 Fe_3O_4@CS和FeSBA的表征 | 第59-63页 |
| 3.3.2 Fe_3O_4@CS和FeSBA固定化酶结果 | 第63-64页 |
| 3.3.3 pH值对Fe_3O_4@CS和FeSBA固定化酶的影响 | 第64页 |
| 3.3.4 催化温度对Fe_3O_4@CS和FeSBA固定化酶的影响 | 第64-65页 |
| 3.3.5 Fe_3O_4@CS和FeSBA固定化酶的热稳定性 | 第65-66页 |
| 3.3.6 Fe_3O_4@CS和FeSBA固定化酶的重复使用性 | 第66页 |
| 3.4 小结 | 第66-67页 |
| 参考文献 | 第67-70页 |
| 第四章 固定化酶催化布洛芬酯的手性拆分的研究 | 第70-84页 |
| 4.1 引言 | 第70-71页 |
| 4.2 实验部分 | 第71-74页 |
| 4.2.1 原料及实验仪器 | 第71-72页 |
| 4.2.2 固定化酶的制备 | 第72页 |
| 4.2.3 布洛芬酯类的合成 | 第72页 |
| 4.2.4 测定方法 | 第72-73页 |
| 4.2.5 不同固定化酶催化布洛芬酯类不对称水解 | 第73页 |
| 4.2.6 固定化酶催化布洛芬酯类不对称水解条件的优化 | 第73-74页 |
| 4.3 实验结果 | 第74-81页 |
| 4.3.1 布洛芬酯类的核磁表征 | 第74-77页 |
| 4.3.2 不同固定化酶对催化布洛芬酯类不对称水解的研究 | 第77-78页 |
| 4.3.3 固定化酶催化布洛芬酯类不对称水解的条件优化 | 第78-81页 |
| 4.4 小结 | 第81-82页 |
| 参考文献 | 第82-84页 |
| 主要结论 | 第84-86页 |
| 硕士生期间研究成果 | 第86-87页 |
| 致谢 | 第87页 |
