| 致谢 | 第5-6页 |
| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 第一章 绪论 | 第14-32页 |
| 1.1 引言 | 第14-15页 |
| 1.2 微生物合成吡咯喹啉醌(PQQ)的研究进展 | 第15-25页 |
| 1.2.1 PQQ分子结构 | 第15-17页 |
| 1.2.2 合成PQQ的微生物分布 | 第17页 |
| 1.2.3 PQQ生理功能 | 第17-20页 |
| 1.2.4 微生物合成PQQ的相关基因 | 第20-22页 |
| 1.2.5 PQQ生物合成途径 | 第22-23页 |
| 1.2.6 提高微生物合成PQQ水平的方法 | 第23-25页 |
| 1.3 微生物合成聚苹果酸(PMLA)的研究进展 | 第25-30页 |
| 1.3.1 PMLA分子结构 | 第25-26页 |
| 1.3.2 合成PMLA的微生物分布 | 第26页 |
| 1.3.3 PMLA生理功能 | 第26-27页 |
| 1.3.4 PMLA生物合成途径 | 第27-28页 |
| 1.3.5 提高微生物合成PMLA水平的方法 | 第28-30页 |
| 1.4 本论文的研究思路和内容 | 第30-32页 |
| 第二章 PQQ不同测定方法的比较研究 | 第32-42页 |
| 2.1 前言 | 第32-33页 |
| 2.2 实验材料与方法 | 第33-36页 |
| 2.2.1 实验材料与试剂 | 第33页 |
| 2.2.2 实验仪器 | 第33页 |
| 2.2.3 实验方法 | 第33-36页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第36-41页 |
| 2.3.1 三种方法的测定结果 | 第36-38页 |
| 2.3.2 检测限和检测范围 | 第38-39页 |
| 2.3.3 精密度比较 | 第39-40页 |
| 2.3.4 样品检测和加样回收率 | 第40-41页 |
| 2.4 小结 | 第41-42页 |
| 第三章 PQQ高产菌高通量筛选模型建立与筛选研究 | 第42-58页 |
| 3.1 前言 | 第42-43页 |
| 3.2 实验材料与方法 | 第43-48页 |
| 3.2.1 实验材料与试剂 | 第43页 |
| 3.2.2 实验仪器 | 第43-44页 |
| 3.2.3 实验方法 | 第44-48页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第48-57页 |
| 3.3.1 高通量筛选模型的建立 | 第48页 |
| 3.3.2 高通量筛选结果与高产菌鉴定 | 第48-53页 |
| 3.3.3 产PQQ性能罐上验证 | 第53-55页 |
| 3.3.4 发酵产物鉴定 | 第55-57页 |
| 3.4 小结 | 第57-58页 |
| 第四章 多元建模系统优化培养组分生物合成PQQ研究 | 第58-84页 |
| 4.1 前言 | 第58-59页 |
| 4.2 实验材料与方法 | 第59-62页 |
| 4.2.1 实验材料与试剂 | 第59页 |
| 4.2.2 实验仪器 | 第59-60页 |
| 4.2.3 实验方法 | 第60-62页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第62-82页 |
| 4.3.1 关键培养基组分的选择 | 第62-70页 |
| 4.3.2 响应面(RSM)与人工神经网络(ANN)优化 | 第70-80页 |
| 4.3.3 罐上发酵验证 | 第80-82页 |
| 4.4 小结 | 第82-84页 |
| 第五章 生物合成PQQ影响因子寻优与关键节点控制发酵研究 | 第84-100页 |
| 5.1 前言 | 第84页 |
| 5.2 实验材料与方法 | 第84-85页 |
| 5.2.1 实验材料与试剂 | 第84-85页 |
| 5.2.2 实验仪器 | 第85页 |
| 5.2.3 实验方法 | 第85页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第85-99页 |
| 5.3.1 摇瓶培养条件优化 | 第85-87页 |
| 5.3.2 发酵罐发酵条件优化 | 第87-95页 |
| 5.3.3 双阶段pH补料发酵 | 第95-99页 |
| 5.4 小结 | 第99-100页 |
| 第六章 基于PQQ高产菌高通量筛选的诱变育种及发酵研究 | 第100-112页 |
| 6.1 前言 | 第100页 |
| 6.2 实验材料与方法 | 第100-103页 |
| 6.2.1 实验材料与试剂 | 第100-101页 |
| 6.2.2 实验仪器 | 第101页 |
| 6.2.3 实验方法 | 第101-103页 |
| 6.3 结果与讨论 | 第103-111页 |
| 6.3.1 不同诱变方法的诱变条件优化 | 第103-106页 |
| 6.3.2 高产突变菌株筛选与遗传稳定性检验 | 第106-109页 |
| 6.3.3 发酵罐发酵验证 | 第109-111页 |
| 6.4 小结 | 第111-112页 |
| 第七章 细胞循环利用高效合成聚苹果酸的研究 | 第112-132页 |
| 7.1 前言 | 第112-113页 |
| 7.2 实验材料与方法 | 第113-116页 |
| 7.2.1 实验材料与试剂 | 第113页 |
| 7.2.2 实验仪器 | 第113-114页 |
| 7.2.3 实验方法 | 第114-116页 |
| 7.3 结果与讨论 | 第116-131页 |
| 7.3.1 初始糖浓度选择与分批、补料发酵 | 第116-119页 |
| 7.3.2 膜微滤条件优化与循环发酵 | 第119-128页 |
| 7.3.3 离心回收细胞循环发酵 | 第128-130页 |
| 7.3.4 不同碳源的两种循环发酵工艺比较 | 第130-131页 |
| 7.4 小结 | 第131-132页 |
| 第八章 钙离子影响PMLA合成的蛋白质组学分析研究 | 第132-142页 |
| 8.1 前言 | 第132-133页 |
| 8.2 实验材料与方法 | 第133-135页 |
| 8.2.1 实验材料与试剂 | 第133页 |
| 8.2.2 实验仪器 | 第133-134页 |
| 8.2.3 实验方法 | 第134-135页 |
| 8.3 结果与讨论 | 第135-140页 |
| 8.3.1 钙离子对PMLA合成的影响 | 第135页 |
| 8.3.2 细胞全蛋白定性分析 | 第135-136页 |
| 8.3.3 差异蛋白GO分析 | 第136-140页 |
| 8.4 小结 | 第140-142页 |
| 第九章 结论与展望 | 第142-146页 |
| 9.1 结论 | 第142-144页 |
| 9.2 创新点 | 第144页 |
| 9.3 展望 | 第144-146页 |
| 参考文献 | 第146-160页 |
| 附录 | 第160-164页 |
| 作者简历 | 第164页 |
