| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 符号说明 | 第16-17页 |
| 第一章 绪论 | 第17-27页 |
| 1.1 沸石分子筛 | 第17-18页 |
| 1.1.1 沸石分子筛的制备研究进展 | 第17页 |
| 1.1.2 ZSM-5沸石分子筛合成方法及机理 | 第17-18页 |
| 1.2 功能化分子筛 | 第18-20页 |
| 1.2.1 功能化分子筛的研究进展 | 第18-19页 |
| 1.2.2 功能化分子筛的制备方法 | 第19-20页 |
| 1.3 正丁醇发酵液的吸附分离研究 | 第20-22页 |
| 1.3.1 正丁醇的研究进展 | 第20-21页 |
| 1.3.2 正丁醇发酵液的分离纯化研究进展 | 第21-22页 |
| 1.4 海藻糖合成酶 | 第22-24页 |
| 1.4.1 海藻糖合成酶的研究进展 | 第22页 |
| 1.4.2 酶的固定化方法研究进展 | 第22-23页 |
| 1.4.3 多孔硅在固定化酶方面的应用研究 | 第23-24页 |
| 1.5 本课题的研究内容及意义 | 第24-27页 |
| 第二章 亲水/疏水功能性多孔硅的制备及其对丁醇模拟发酵液的吸附效果研究 | 第27-39页 |
| 2.1 前言 | 第27页 |
| 2.2 实验用品 | 第27-28页 |
| 2.2.1 实验材料与试剂 | 第27页 |
| 2.2.2 实验仪器 | 第27-28页 |
| 2.3 实验内容 | 第28-30页 |
| 2.3.1 亲水/疏水功能性多孔硅的制备方法 | 第28-29页 |
| 2.3.2 亲水/疏水功能性多孔硅的表征 | 第29-30页 |
| 2.3.3 DPTS的添加量对材料疏水特性的影响 | 第30页 |
| 2.3.4 APS的添加量对材料的吸附特性的影响 | 第30页 |
| 2.3.5 APS-DPTS-Silicalite-1材料的吸附时间优化 | 第30页 |
| 2.3.6 APS-DPTS-Silicalite-1材料的最终吸附能力 | 第30页 |
| 2.4 实验结果及分析 | 第30-38页 |
| 2.4.1 扫描电镜表征 | 第30-31页 |
| 2.4.2 X射线光电子能谱表征 | 第31-34页 |
| 2.4.3 热重分析 | 第34页 |
| 2.4.4 Br(?)nsted酸分析 | 第34页 |
| 2.4.5 DPTS的添加量的优化实验 | 第34-35页 |
| 2.4.6 APS的添加量的优化实验 | 第35-36页 |
| 2.4.7 Silicalite-1材料的吸附速率 | 第36-37页 |
| 2.4.8 Silicalite-1材料对乙醇以及2,3-丁二醇的吸附能力 | 第37-38页 |
| 2.5 本章小结 | 第38-39页 |
| 第三章 多孔硅的环氧化及其对海藻糖合成酶的固定化研究 | 第39-47页 |
| 3.1 前言 | 第39页 |
| 3.2 实验用品 | 第39-40页 |
| 3.2.1 实验试剂 | 第39页 |
| 3.2.2 实验仪器 | 第39-40页 |
| 3.3 实验内容 | 第40-42页 |
| 3.3.1 Silicalite-1多孔硅表面功能化及其关于固定化酶的制备 | 第40页 |
| 3.3.2 酶催化反应 | 第40-41页 |
| 3.3.3 GTS添加量的优化实验 | 第41页 |
| 3.3.4 粗酶液的添加量的优化实验 | 第41-42页 |
| 3.3.5 温度对环氧固定化酶的催化效果的影响 | 第42页 |
| 3.3.6 pH对海藻糖合成酶催化转化活性的影响 | 第42页 |
| 3.3.7 GTS-Silicalite-1固定化酶的多次循环实验 | 第42页 |
| 3.4 实验结果及分析 | 第42-46页 |
| 3.4.1 GTS添加量的优化实验 | 第42-43页 |
| 3.4.2 粗酶液的添加量的优化实验 | 第43-44页 |
| 3.4.3 温度对固定化酶催化转化效率的影响分析 | 第44页 |
| 3.4.4 pH对海藻糖合成酶活性的影响 | 第44-46页 |
| 3.4.5 固定化酶催化转化制备海藻糖 | 第46页 |
| 3.5 总结 | 第46-47页 |
| 第四章 共缩聚法制备环氧基团固定化酶载体 | 第47-57页 |
| 4.1 前言 | 第47页 |
| 4.2 实验材料及仪器 | 第47-48页 |
| 4.2.1 实验材料 | 第47页 |
| 4.2.2 实验仪器 | 第47-48页 |
| 4.3 实验内容 | 第48-50页 |
| 4.3.1 共缩聚法制备全环氧基团的固定化酶载体的方法 | 第48-49页 |
| 4.3.2 计算方法 | 第49页 |
| 4.3.3 全环氧硅载体的表征 | 第49页 |
| 4.3.4 GTS的添加量对固定化酶效果的影响 | 第49页 |
| 4.3.5 粗酶液的添加量对固定化酶效果的影响 | 第49页 |
| 4.3.6 温度对环氧固定化酶的催化效果的影响 | 第49-50页 |
| 4.3.7 pH对海藻糖合成酶催化转化活性的影响 | 第50页 |
| 4.3.8 环氧固定化酶的连续催化批次分析 | 第50页 |
| 4.4 实验结果及分析 | 第50-55页 |
| 4.4.1 扫描电镜表征 | 第50-51页 |
| 4.4.2 GTS添加量对固定化酶效果的影响 | 第51-52页 |
| 4.4.3 粗酶液的添加量对固定化酶的影响 | 第52-53页 |
| 4.4.4 温度对固定化酶效果的影响 | 第53页 |
| 4.4.5 pH对固定化酶性能的影响 | 第53-54页 |
| 4.4.6 固定化酶的连续催化转化实验 | 第54-55页 |
| 4.5 总结 | 第55-57页 |
| 第五章 结论与展望 | 第57-59页 |
| 5.1 结论 | 第57页 |
| 5.2 展望 | 第57-59页 |
| 参考文献 | 第59-63页 |
| 研究成果及发表的学术论文 | 第63-65页 |
| 致谢 | 第65-67页 |
| 作者和导师简介 | 第67-69页 |
| 附件 | 第69-71页 |
