| 中文摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-10页 |
| 英文缩写词表 | 第14-16页 |
| 第1章 引言 | 第16-18页 |
| 第2章 文献综述 肾间质纤维化的研究进展 | 第18-36页 |
| 2.1 CKD与肾间质纤维化 | 第18-19页 |
| 2.2 肾间质纤维化特征 | 第19页 |
| 2.3 肾间质纤维化的发病机制 | 第19-31页 |
| 2.3.1 肾间质纤维化的细胞来源 | 第19-27页 |
| 2.3.2 TIF有关的分子及信号通路 | 第27-31页 |
| 2.4 肾脏的损伤修复与肾间质纤维化 | 第31-34页 |
| 2.4.1 急性肾损伤与肾间质纤维化 | 第31-32页 |
| 2.4.2 衰老与肾间质纤维化 | 第32页 |
| 2.4.3 肾脏的再生与修复 | 第32-34页 |
| 2.4.4 输尿管的梗阻-再通与肾小管上皮细胞的再生与修复 | 第34页 |
| 2.5 肾间质纤维化的治疗 | 第34-36页 |
| 第3章 猪的单侧输尿管梗阻-再通模型的建立 | 第36-46页 |
| 3.1 实验材料和方法 | 第36-38页 |
| 3.1.1 实验动物 | 第36页 |
| 3.1.2 主要仪器设备及耗材 | 第36-37页 |
| 3.1.3 主要试剂 | 第37-38页 |
| 3.1.4 主要溶液配制 | 第38页 |
| 3.2 实验方法 | 第38-39页 |
| 3.2.1 实验动物模型的建立 | 第38-39页 |
| 3.2.2 统计方法 | 第39页 |
| 3.3 实验结果 | 第39-42页 |
| 3.3.1 三种药物联合麻醉效果优于两种药物 | 第39-40页 |
| 3.3.2 成功构建了大动物猪的单侧输尿管梗阻-再通模型 | 第40-42页 |
| 3.4 讨论 | 第42-44页 |
| 3.5 小结 | 第44-46页 |
| 第4章 猪的单侧输尿管梗阻-再通模型的建立与肾脏损伤修复时间节点的实验研究 | 第46-64页 |
| 4.1 实验材料 | 第46-48页 |
| 4.1.1 实验动物分组及标本留取 | 第46页 |
| 4.1.2 主要仪器设备及耗材 | 第46-47页 |
| 4.1.3 主要试剂 | 第47-48页 |
| 4.1.4 主要试剂盒 | 第48页 |
| 4.2 实验方法 | 第48-50页 |
| 4.2.1 标本的收取 | 第48页 |
| 4.2.2 血清肌酐的测定 | 第48页 |
| 4.2.3 过碘酸-雪夫染色（PAS染色） | 第48-49页 |
| 4.2.4 Masson染色 | 第49-50页 |
| 4.2.5 统计方法 | 第50页 |
| 4.3 实验结果 | 第50-60页 |
| 4.3.1 梗阻-再通前后肾功能的评估 | 第53-56页 |
| 4.3.2 组织病理学染色评估肾脏损伤-修复` | 第56-60页 |
| 4.4 讨论 | 第60-62页 |
| 4.5 小结 | 第62-64页 |
| 第5章 猪的单侧输尿管梗阻-再通模型的建立与上皮细胞-间充质转分化的机制研究 | 第64-78页 |
| 5.1 实验材料 | 第64-66页 |
| 5.1.1 实验动物分组及标本留取 | 第64页 |
| 5.1.2 主要设备及耗材 | 第64-65页 |
| 5.1.3 主要试剂 | 第65页 |
| 5.1.4 抗体及试剂盒 | 第65-66页 |
| 5.2 实验方法 | 第66-70页 |
| 5.2.1 肾组织蛋白的提取 | 第66页 |
| 5.2.2 肾组织蛋白浓度测定 | 第66-67页 |
| 5.2.3 根据蛋白浓度测定值进行蛋白变性 | 第67页 |
| 5.2.4 Western Blot相关溶液的配置 | 第67-68页 |
| 5.2.5 制备聚丙烯酰胺凝胶 | 第68-69页 |
| 5.2.6 电泳 | 第69页 |
| 5.2.7 PVDF转膜 | 第69-70页 |
| 5.2.8 加抗体 | 第70页 |
| 5.3 统计 | 第70页 |
| 5.4 结果 | 第70-75页 |
| 5.5 讨论 | 第75-77页 |
| 5.6 小结 | 第77-78页 |
| 结论 | 第78-80页 |
| 课题创新性总结 | 第80-82页 |
| 参考文献 | 第82-96页 |
| 作者简介及在学期间所取得的科研成果 | 第96-98页 |
| 致谢 | 第98-99页 |
