| 摘要 | 第1-8页 |
| ABSTRACT | 第8-16页 |
| 第一章 绪论 | 第16-29页 |
| ·脂肪酶 | 第16-18页 |
| ·脂肪酶的来源 | 第16页 |
| ·脂肪酶的结构及催化机理 | 第16-17页 |
| ·脂肪酶催化的反应及应用 | 第17-18页 |
| ·酶的固定化 | 第18-20页 |
| ·酶固定化的意义 | 第18-19页 |
| ·酶的固定化方法 | 第19-20页 |
| ·磁性纳米粒子 | 第20-22页 |
| ·磁性纳米粒子的制备 | 第20-21页 |
| ·MNPs作为酶载体的应用 | 第21-22页 |
| ·多巴胺修饰化学 | 第22-23页 |
| ·仿生粘附材料的起源和发展 | 第22页 |
| ·多巴胺仿生修饰的酶载体材料 | 第22-23页 |
| ·二氢杨梅素 | 第23-26页 |
| ·DMY的作用与功效 | 第23-25页 |
| ·DMY应用的局限性及改性研究现状 | 第25-26页 |
| ·含深度共熔溶剂体系中的生物催化 | 第26-27页 |
| ·本课题的主要研究内容与意义 | 第27-29页 |
| ·主要研究内容 | 第27页 |
| ·研究意义 | 第27-29页 |
| 第二章 PDA包裹的MNPs的制备及表征 | 第29-37页 |
| ·实验材料 | 第29页 |
| ·主要仪器设备 | 第29页 |
| ·实验方法 | 第29-31页 |
| ·MNPs的制备 | 第29-30页 |
| ·PD-MNPs的制备 | 第30页 |
| ·PD-MNPs的表征 | 第30-31页 |
| ·结果与讨论 | 第31-36页 |
| ·MNPs和PD-MNPs的形貌、尺寸分析 | 第31-32页 |
| ·MNPs和PD-MNPs的XPS分析 | 第32-33页 |
| ·MNPs和PD-MNPs的红外光谱 (FTIR) 分析 | 第33-34页 |
| ·MNPs和PD-MNPs的X射线衍射 (XRD) 分析 | 第34-35页 |
| ·MNPs和PD-MNPs的热重分析 (TGA) | 第35页 |
| ·MNPs和PD-MNPs的震动样品磁强计 (VSM)分析 | 第35-36页 |
| ·本章小结 | 第36-37页 |
| 第三章 PD-MNPs固定化ANL的研究 | 第37-52页 |
| ·实验材料 | 第37页 |
| ·主要仪器设备 | 第37页 |
| ·实验方法 | 第37-40页 |
| ·ANL粗酶蛋白含量的测定 | 第37页 |
| ·ANL@PD-MNPs的制备 | 第37页 |
| ·脂肪酶酶活力和固定化酶蛋白负载量的测定方法 | 第37-38页 |
| ·固定化过程中各因素对酶固定化效果的影响 | 第38-39页 |
| ·ANL@PD-MNPs 的结构表征 | 第39页 |
| ·ANL@PD-MNPs的酶学性质的表征 | 第39-40页 |
| ·结果与讨论 | 第40-51页 |
| ·PD-MNPs/ANL质量比的确定 | 第40-41页 |
| ·ANL@ PD-MNPs制备过程中pH的确定 | 第41-42页 |
| ·ANL@ PD-MNPs制备过程中固定化时间的确定 | 第42-43页 |
| ·ANL@ PD-MNPs的形貌、尺寸 | 第43-44页 |
| ·ANL@ PD-MNPs傅里叶红外光谱分析蛋白二级结构 | 第44-45页 |
| ·ANL@PD-MNPs最适pH的研究 | 第45-46页 |
| ·ANL@PD-MNPs最适温度的研究 | 第46-47页 |
| ·游离ANL和ANL@PD-MNPs的动力学参数 | 第47-48页 |
| ·ANL@PD-MNPs的pH稳定性 | 第48页 |
| ·ANL@PD-MNPs的热稳定性 | 第48-49页 |
| ·ANL@PD-MNPs的溶剂耐受性 | 第49-50页 |
| ·ANL@PD-MNPs的储藏稳定性 | 第50-51页 |
| ·本章小结 | 第51-52页 |
| 第四章 ANL@PD-MNPs催化DMY酰化反应的研究 | 第52-67页 |
| ·实验材料 | 第52页 |
| ·主要仪器设备 | 第52页 |
| ·实验方法 | 第52-57页 |
| ·PD-MNPs载体材料的制备 | 第52页 |
| ·固定化酶ANL@PD-MNPs的制备 | 第52页 |
| ·固定化酶ANL@PD-MNPs中的酶负载量以及酶活的测定方法 | 第52页 |
| ·固定化酶ANL@PD-MNPs催化二氢杨梅素酰化反应的一般过程 | 第52-53页 |
| ·高效液相色谱（HPLC）分析 | 第53页 |
| ·反应初速度、底物转化率、产物选择性的确定 | 第53页 |
| ·酰基供体对ANL@PD-MNPs催化DMY酰化反应的影响 | 第53-54页 |
| ·反应溶剂对ANL@PD-MNPs催化DMY应的影响 | 第54页 |
| ·底物摩尔比对ANL@PD-MNPs催化DMY酰化反应的影响 | 第54页 |
| ·温度对ANL@PD-MNPs催化DMY酰化反应的影响 | 第54-55页 |
| ·ANL@PD-MNPs量对其催化DMY酰化反应的影响 | 第55页 |
| ·ANL@PD-MNPs操作稳定性的研究 | 第55页 |
| ·DMY乙酰化产物的液质联用分析 | 第55页 |
| ·DMY乙酰化产物的分离纯化 | 第55-56页 |
| ·DMY乙酰化产物的核磁共振分析 | 第56-57页 |
| ·结果与讨论 | 第57-65页 |
| ·酰基供体对ANL@PD-MNPs催化DMY酰化反应的影响 | 第57页 |
| ·DMY乙酰化产物的HPLC-MS分析 | 第57-60页 |
| ·DMY乙酰化产物的结构鉴定 | 第60-61页 |
| ·反应溶剂对ANL@PD-MNPs催化DMY乙酰化反应的影响 | 第61-62页 |
| ·底物摩尔比对ANL@PD-MNPs催化DMY乙酰化反应的影响 | 第62-63页 |
| ·温度对ANL@PD-MNPs催化DMY乙酰化反应的影响 | 第63-64页 |
| ·ANL@PD-MNPs加入量对其催化DMY乙酰化反应的影响 | 第64-65页 |
| ·ANL@PD-MNPs的操作稳定性研究 | 第65页 |
| ·本章小结 | 第65-67页 |
| 第五章 含DES体系中ANL@PD-MNPs催化DMY乙酰化反应的研究 | 第67-78页 |
| ·实验材料 | 第67页 |
| ·主要仪器设备 | 第67页 |
| ·实验方法 | 第67-70页 |
| ·ANL@PD-MNPs的制备 | 第67页 |
| ·ANL@PD-MNPs中的酶负载量以及酶活的测定方法 | 第67页 |
| ·DESs的合成 | 第67页 |
| ·在DESs或者混合溶剂体系中ANL@PD-MNPs催化DMY乙酰化反应的一般过程 | 第67页 |
| ·在不同的DESs中ANL@PD-MNPs催化DMY乙酰化的研究 | 第67-68页 |
| ·不同比例混合溶剂对ANL@PD-MNPs催化DMY乙酰化反应的研究 | 第68页 |
| ·底物摩尔比对ANL@PD-MNPs在ChCl:Glycerol-DMSO (1 : 3)中催化DMY乙酰化反应的影响 | 第68页 |
| ·酶量对ANL@PD-MNPs在ChCl:Glycerol-DMSO (1 : 3)中催化DMY乙酰化反应的影响 | 第68-69页 |
| ·ANL@PD-MNPs在反应介质ChCl:Glycerol-DMSO (1 : 3)中操作稳定性的研究 | 第69页 |
| ·DMY及DMY16乙酸酯脂溶性的测定 | 第69页 |
| ·DMY及DMY16乙酸酯的抗氧化性能力的研究 | 第69-70页 |
| ·结果与讨论 | 第70-77页 |
| ·在不同DESs反应介质中ANL@PD-MNPs催化DMY乙酰化的影响 | 第70-71页 |
| ·不同比例混合溶剂对ANL@PD-MNPs催化DMY乙酰化反应的影响 | 第71-72页 |
| ·底物摩尔比对ANL@PD-MNPs催化DMY乙酰化反应的影响 | 第72-73页 |
| ·ANL@PD-MNPs酶量对其催化DMY乙酰化反应的影响 | 第73页 |
| ·ANL@PD-MNPs在反应介质ChCl:Glycerol-DMSO (1 : 3)中操作稳定性的研究 | 第73-74页 |
| ·DMY和DMY16乙酸酯脂溶性的测定 | 第74页 |
| ·DMY和DMY16乙酸酯清除DPPH自由基能力的测定 | 第74-75页 |
| ·DMY和DMY16乙酸酯羟基自由基清除能力的测定 | 第75-76页 |
| ·DMY和DMY16乙酸酯螯合Fe2+能力的测定 | 第76-77页 |
| ·本章小结 | 第77-78页 |
| 结论与展望 | 第78-80页 |
| 参考文献 | 第80-88页 |
| 附录 校正曲线 | 第88-89页 |
| 攻读硕士学位期间取得的研究成果 | 第89-90页 |
| 致谢 | 第90-91页 |
| 附件 | 第91页 |
