中国花生品种遗传多样性研究及分子ID数据库的构建
| 摘要 | 第1-6页 |
| ABSTRACT | 第6-11页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-22页 |
| ·花生简介 | 第11页 |
| ·核心种质 | 第11-12页 |
| ·核心种质的定义 | 第11页 |
| ·核心种质的应用 | 第11-12页 |
| ·遗传多样性研究 | 第12-13页 |
| ·遗传多样性的定义 | 第12页 |
| ·遗传多样性的研究意义 | 第12-13页 |
| ·遗传多样性研究在花生中的应用 | 第13页 |
| ·遗传标记 | 第13-19页 |
| ·形态学标记 | 第14页 |
| ·细胞学标记 | 第14页 |
| ·生物化学标记 | 第14-15页 |
| ·免疫学标记 | 第15页 |
| ·分子标记 | 第15-19页 |
| ·RFLP 标记 | 第16页 |
| ·RAPD 标记 | 第16-17页 |
| ·AFLP 标记 | 第17页 |
| ·SNP 标记 | 第17-18页 |
| ·SSR 标记 | 第18-19页 |
| ·AhMITE 标记 | 第19页 |
| ·分子身份证 | 第19-20页 |
| ·分子身份证的定义 | 第19页 |
| ·分子身份证与指纹图谱的区别 | 第19-20页 |
| ·本课题研究的目的及内容 | 第20-21页 |
| ·本课题的创新点 | 第21-22页 |
| 第二章 实验部分 | 第22-41页 |
| ·材料与仪器 | 第22-32页 |
| ·花生材料 | 第22-26页 |
| ·引物 | 第26-31页 |
| ·实验药品 | 第31-32页 |
| ·实验方法 | 第32-39页 |
| ·技术路线 | 第32-33页 |
| ·DNA 快速提取方法的优化 | 第33-37页 |
| ·实验材料 | 第33页 |
| ·DNA 的提取 | 第33-34页 |
| ·改良高通量 DNA 提取法 | 第33页 |
| ·改良 SDS 简易法 | 第33页 |
| ·改良 TPS 法 | 第33-34页 |
| ·改良 TENP 法 | 第34页 |
| ·DNA 的质量检测 | 第34-37页 |
| ·琼脂糖凝胶电泳检测 | 第34页 |
| ·紫外分光光度计检测 | 第34-35页 |
| ·SSR 标记分析及检测 | 第35-37页 |
| ·219 份花生材料 DNA 的提取 | 第37-38页 |
| ·提取 DNA 的试剂准备 | 第37页 |
| ·CTAB 法提取 DNA | 第37-38页 |
| ·219 份花生材料 DNA 的质量检测 | 第38页 |
| ·琼脂糖凝胶电泳检测 | 第38页 |
| ·紫外分光光度计检测 | 第38页 |
| ·219 份花生材料 DNA 的 PCR 扩增 | 第38-39页 |
| ·219 份花生材料的电泳检测 | 第39页 |
| ·带型统计 | 第39页 |
| ·遗传多样性研究 | 第39-40页 |
| ·ID 数据库的构建 | 第40-41页 |
| 第三章 结果与分析 | 第41-67页 |
| ·DNA 快速提取方法的优化 | 第41-44页 |
| ·不同 DNA 提取方法的比较 | 第41-42页 |
| ·DNA 的质量检测 | 第42-43页 |
| ·紫外分光光度计检测 | 第42页 |
| ·琼脂糖凝胶电泳检测 | 第42-43页 |
| ·SSR 分析 | 第43-44页 |
| ·219 份花生材料 DNA 的提取 | 第44-49页 |
| ·琼脂糖凝胶电泳检测 | 第44页 |
| ·紫外分光光度计检测 | 第44-49页 |
| ·SSR 分子标记 | 第49-51页 |
| ·AhTE 分子标记 | 第51-53页 |
| ·遗传多样性分析 | 第53-61页 |
| ·219 份花生材料的遗传多样性分析 | 第53-58页 |
| ·山东省花生品种的遗传多样性分析 | 第58-61页 |
| ·分子 ID 数据库的构建 | 第61-67页 |
| ·SSR 引物分子 ID 的构建 | 第61-65页 |
| ·AhTE 引物分子 ID 的构建 | 第65-67页 |
| 第四章 讨论 | 第67-71页 |
| ·花生基因组 DNA 的提取 | 第67-68页 |
| ·分子标记 | 第68页 |
| ·遗传多样性研究 | 第68-69页 |
| ·分子 ID 数据库的构建 | 第69-70页 |
| ·总结 | 第70-71页 |
| 参考文献 | 第71-77页 |
| 附录 1 | 第77-83页 |
| 附录 2 | 第83-90页 |
| 致谢 | 第90-91页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第91-92页 |