| 中文摘要 | 第1-4页 |
| Abstract | 第4-10页 |
| 第一章 前言 | 第10-27页 |
| 1 血浆蛋白质组学研究概况 | 第10-12页 |
| 2 去除血浆高丰度蛋白,富集低丰度蛋白的方法 | 第12-20页 |
| ·有机溶剂沉淀法 | 第12页 |
| ·血浆蛋白预分离法 | 第12-14页 |
| ·多重窄范围PI胶条富集血浆中低丰度蛋白 | 第14页 |
| ·采集局部静脉血富集低丰度蛋白 | 第14页 |
| ·亲和层析法 | 第14-16页 |
| ·染料亲和法 | 第15页 |
| ·抗体亲和法 | 第15-16页 |
| ·基于特异性鸡卵黄抗体蛋白(IgY)的抗体亲和法 | 第16-20页 |
| ·卵黄抗体(IgY)的特性 | 第16-19页 |
| ·国内外以IgY为配基去除人血浆高丰度蛋白的研究状况 | 第19-20页 |
| 3 鸡卵黄抗体(IgY)的制备 | 第20-24页 |
| ·鸡的饲养与免疫 | 第20-22页 |
| ·鸡的饲养 | 第20-21页 |
| ·免疫剂量和方法 | 第21-22页 |
| ·IgY的分离纯化 | 第22-24页 |
| ·IgY的粗分离 | 第22-23页 |
| ·IgY的纯化 | 第23-24页 |
| 4 亲和基质的选择—金磁复合微粒的应用 | 第24-26页 |
| 5 本研究的内容、目的和意义 | 第26-27页 |
| 第二章 实验部分 | 第27-58页 |
| 第一部分 特异性鸡卵黄抗体(IgY)的制备 | 第27-47页 |
| 1 材料与方法 | 第27-34页 |
| ·实验动物 | 第27页 |
| ·免疫原 | 第27页 |
| ·试剂与仪器 | 第27-28页 |
| ·试剂 | 第27页 |
| ·主要仪器设备 | 第27-28页 |
| ·主要试剂配制: | 第28-31页 |
| ·禽用生理盐水: | 第28页 |
| ·ELISA相关试剂配制: | 第28-29页 |
| ·饱和硫酸铵的配制: | 第29页 |
| ·透析液: | 第29页 |
| ·SDS-PAGE溶液的配制: | 第29-30页 |
| ·层析缓冲液的配制 | 第30-31页 |
| ·实验方法 | 第31-34页 |
| ·免疫原的制备 | 第31页 |
| ·动物免疫 | 第31页 |
| ·免疫血清效价检测 | 第31-32页 |
| ·IgY的分离提取 | 第32-33页 |
| ·IgY的纯化及效价检测 | 第33-34页 |
| 2 结果与讨论 | 第34-46页 |
| ·ELISA法检测不同免疫原免疫鸡血清效价变化情况 | 第34-39页 |
| ·HSA免疫鸡血清抗体效价变化 | 第34-35页 |
| ·人血浆IgG免疫鸡血清抗体效价变化 | 第35-36页 |
| ·HSA与IgG混合免疫原免疫鸡血清中效价变化 | 第36页 |
| ·人全血浆免疫鸡血清中效价变化 | 第36-37页 |
| ·聚合HSA电泳图谱及聚合HSA免疫鸡血清中效价变化 | 第37-39页 |
| ·免疫扩散法对不同免疫原免疫效价的检测 | 第39-40页 |
| ·鸡卵黄IgY的分离提取、纯化工艺条件的研究 | 第40-46页 |
| ·卵黄溶解条件的确定 | 第40-42页 |
| ·提取条件的确定 | 第42-43页 |
| ·IgY的纯化及效价检测 | 第43-46页 |
| 3 本部分小结 | 第46-47页 |
| 第二部分 特异性IgY对人血浆部分高丰度蛋白去除的研究 | 第47-58页 |
| 1 材料与方法 | 第47-51页 |
| ·材料 | 第47-48页 |
| ·试剂与仪器 | 第48页 |
| ·主要试剂的配制 | 第48-49页 |
| ·去除实验需配制的溶液 | 第48页 |
| ·免疫电泳溶液配制 | 第48-49页 |
| ·实验方法 | 第49-51页 |
| ·确定载体最佳包被条件 | 第49页 |
| ·血浆高丰度蛋白的去除 | 第49-51页 |
| 2 结果与讨论 | 第51-57页 |
| ·IgY紫外吸收标准曲线 | 第51页 |
| ·载体最佳包被条件确定 | 第51-53页 |
| ·血浆中部分高丰度蛋白去除研究 | 第53-55页 |
| ·免疫电泳分析抗全血浆IgY特异性种类 | 第55-57页 |
| 3 小结 | 第57-58页 |
| 结论: | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-66页 |
| 致谢 | 第66页 |
