致谢 | 第7-8页 |
摘要 | 第8-10页 |
abstract | 第10-11页 |
第一章 绪论 | 第17-23页 |
1.1 拟南芥简介 | 第17页 |
1.2 盐胁迫对植物的危害 | 第17-19页 |
1.2.1 盐胁迫对种子萌发的影响 | 第17-18页 |
1.2.2 盐胁迫增强对植物的渗透胁迫和离子胁迫 | 第18页 |
1.2.3 盐胁迫引发的次级氧化胁迫对植物的影响 | 第18-19页 |
1.2.4 盐胁迫对植物蛋白质和脂类合成的影响 | 第19页 |
1.2.5 盐胁迫对植物抗氧化酶系统的影响 | 第19页 |
1.3 植物响应盐胁迫的机制 | 第19-20页 |
1.3.1 细胞的渗透调节 | 第19-20页 |
1.3.2 活性氧清除系统 | 第20页 |
1.3.3 盐离子外排和细胞内区隔化 | 第20页 |
1.4 SOS信号传导途径 | 第20页 |
1.5 组蛋白的生物学功能 | 第20-21页 |
1.6 WRKY转录家族 | 第21-22页 |
1.6.1 WRKY转录家族的介绍 | 第21页 |
1.6.2 WRKY转录家族对植物非生物胁迫的调控 | 第21页 |
1.6.3 WRKY1基因参与调控植物盐胁迫响应 | 第21-22页 |
1.7 立题依据及研究意义 | 第22-23页 |
第二章 材料和方法 | 第23-47页 |
2.1 实验材料 | 第23页 |
2.1.1 植物材料 | 第23页 |
2.1.2 菌体和质粒材料 | 第23页 |
2.2 主要试剂 | 第23-31页 |
2.2.1 常用分子生物学试剂盒 | 第23页 |
2.2.2 常用酶类 | 第23页 |
2.2.3 常用生化试剂 | 第23-24页 |
2.2.4 常用溶液与试剂配制 | 第24-30页 |
2.2.5 其他试剂配制方法 | 第30-31页 |
2.3 主要仪器设备 | 第31-32页 |
2.4 实验方法 | 第32-46页 |
2.4.1 灭菌和消毒 | 第32页 |
2.4.2 拟南芥培养 | 第32-33页 |
2.4.3 大肠杆菌DH5α感受态细胞的制备与转化 | 第33-34页 |
2.4.4 农杆菌GV3101感受态细胞的制备与转化 | 第34页 |
2.4.5 CTAB法提取全基因组DNA | 第34-35页 |
2.4.6 Trizol法提取总RNA | 第35-36页 |
2.4.7 逆转录合成cDNA | 第36页 |
2.4.8 实时荧光定量PCR | 第36-37页 |
2.4.9 琼脂糖凝胶电泳检测核酸 | 第37页 |
2.4.10 PCR反应体系及程序 | 第37-38页 |
2.4.11 实验所用引物 | 第38-40页 |
2.4.12 限制性内切酶双酶切体系 | 第40页 |
2.4.13 T4连接反应 | 第40页 |
2.4.14 花序侵染法转化拟南芥 | 第40-41页 |
2.4.15 转基因阳性株的筛选 | 第41页 |
2.4.16 钠钾含量测定 | 第41-42页 |
2.4.17 染色质免疫共沉淀 | 第42-44页 |
2.4.18 酵母双杂交 | 第44-45页 |
2.4.19 烟草瞬时表达 | 第45-46页 |
2.4.20 GUS染色 | 第46页 |
2.5 实验数据处理及统计分析 | 第46-47页 |
第三章 结果与分析 | 第47-60页 |
3.1 拟南芥HIS1-3基因对盐胁迫响应的调节 | 第47-50页 |
3.1.1 拟南芥HIS1-3基因功能缺失突变体鉴定以及对盐胁迫响应的调节 | 第47-48页 |
3.1.2 HIS1-3基因表达模式 | 第48-50页 |
3.2 拟南芥HIS1-3基因通过SOS途径调节钠离子含量 | 第50-51页 |
3.3 酵母双杂交 | 第51-53页 |
3.3.1 WRKY1亚细胞定位 | 第51页 |
3.3.2 酵母双杂交载体构建 | 第51-53页 |
3.3.3 酵母双杂交结果 | 第53页 |
3.4 瞬时表达 | 第53-57页 |
3.4.1 瞬时表达相关载体构建 | 第53-55页 |
3.4.2 瞬时表达实验结果 | 第55-57页 |
3.5 染色质免疫共沉淀 | 第57-60页 |
3.5.1 SOS途径相关基因启动子上的W-box分析 | 第57页 |
3.5.2 WRKY1与SOS途径相关基因的启动子直接结合 | 第57-58页 |
3.5.3 HIS1-3与SOS途径相关基因的启动子直接结合 | 第58-60页 |
第四章 讨论与展望 | 第60-62页 |
参考文献 | 第62-69页 |
攻读硕士学位期间的学术活动及成果情况 | 第69-70页 |