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激素—生长因子—黏附因子调节系统在牦牛子宫内膜上皮的相关性研究

摘要第4-7页
Summary第7-9页
文献综述第19-38页
    第一章 子宫内膜上皮细胞与胚胎的附植第19-32页
        1 前言第19页
        2 子宫内膜上皮第19-23页
            2.1 子宫内膜结构第19-20页
            2.2 腺体的分布及功能第20页
            2.3 生理周期的形成第20-21页
            2.4 子宫对胚胎附植的意义第21-23页
        3 胚胎第23-27页
            3.1 未附植前胚胎的结构第23-24页
            3.2 胚胎的形成及发育过程第24-27页
                3.2.1 卵子的形成第24页
                3.2.2 精子的形成第24-25页
                3.2.3 受精第25-26页
                3.2.4 附植前胚胎的发育第26-27页
        4 胚胎附植原理及附植方式第27-32页
            4.1 胚胎附植原理第27-28页
            4.2 不同的附植方式第28-32页
                4.2.1 偏心附植第28-29页
                4.2.2 中心附植第29-30页
                4.2.3 裂缝附植第30-32页
    第二章 胚胎附植窗口期的调控第32-38页
        1 激素-生长因子-黏附调节物系统第32-34页
            1.1 子宫内膜影响胚胎附植的因素第32-33页
            1.2 激素-生长因子-黏附调节物系统第33-34页
        2 激素在附植窗口期的作用及变化第34-35页
            2.1 雌激素在附植窗口期的变化第34页
            2.2 孕激素在附植窗口期的变化第34-35页
        3 生长因子在附植窗口期的作用第35-36页
            3.1 上皮细胞生长因子(EGF)家族成员第35-36页
            3.2 胰岛素样生长因子1(IGF-1)第36页
        4 黏附因子在附植窗口期的作用第36-38页
试验研究第38-91页
    第一章 牦牛子宫内膜上皮细胞的分离培养第38-49页
        1 试验材料第38-40页
            1.1 动物子宫样品采集第38-39页
            1.2 仪器设备第39页
            1.3 主要试剂第39页
            1.4 主要试剂的配制第39-40页
        2 试验方法第40-44页
            2.1 子宫样品的采集与处理第40页
            2.2 牦牛子宫内膜上皮细胞的最佳消化方法筛选第40-42页
                2.2.1 牦牛子宫内膜上皮的分离第40-41页
                2.2.2 不同消化方法对细胞进行消化第41页
                2.2.3 细胞MTT测试判定不同消化方法消化细胞数量第41-42页
                2.2.4 显微镜观察计数法计算上皮细胞消化率第42页
            2.3 子宫内膜上皮细胞的纯化第42-43页
                2.3.1 差速消化法进行纯化第42页
                2.3.2 差速贴壁法对细胞进行纯化第42-43页
            2.4 细胞的传代第43页
            2.5 细胞的冻存与复苏第43-44页
                2.5.1 细胞的冻存第43页
                2.5.2 细胞的复苏第43-44页
        3 结果与分析第44-46页
            3.1 最佳消化方法筛选第44-45页
                3.1.1 细胞MTT检测判定不同消化方法消化细胞数量第44页
                3.1.2 上皮细胞消化率第44-45页
            3.2 细胞的纯化第45-46页
                3.2.1 差速消化法纯化细胞第45页
                3.2.2 差速贴壁法纯化细胞第45-46页
            3.3 细胞形态观察第46页
        4 讨论第46-48页
        5 小结第48-49页
    第二章 牦牛子宫内膜上皮细胞的鉴定与特性研究第49-57页
        1 试验材料第49-50页
            1.1 样品来源第49页
            1.2 主要试剂第49页
            1.3 主要试剂配制第49-50页
        2 试验方法第50-53页
            2.1 牦牛子宫内膜上皮细胞生长曲线绘制第50页
            2.2 牦牛子宫内膜上皮细胞免疫组化鉴定第50-51页
            2.3 牦牛子宫内膜上皮细胞福尔根染色第51-52页
            2.4 牦牛子宫内膜上皮细胞核型分析第52-53页
                2.4.1 染色体标本的制作第52页
                2.4.2 核型结果分析方法第52-53页
        3 结果与分析第53-55页
            3.1 牦牛子宫内膜上皮细胞生长曲线第53页
            3.2 牦牛子宫内膜上皮细胞免疫组化鉴定第53-54页
            3.3 牦牛子宫内膜上皮细胞福尔根染色第54页
            3.4 牦牛子宫内膜上皮细胞核型分析第54-55页
        4 讨论第55-56页
        5 小结第56-57页
    第三章 不同浓度的雌二醇和孕酮对牦牛子宫内膜上皮细胞分泌表皮生长因子和胰岛素样生长因子的影响第57-77页
        1 试验材料第57-58页
            1.1 细胞来源第57页
            1.2 主要仪器第57-58页
            1.3 主要试剂第58页
        2 试验方法第58-67页
            2.1 最佳诱导时间的确定第58-61页
                2.1.1 细胞MTT检测细胞浓度第58-59页
                2.1.2 Real-timePCR法检测EGF与IGF-1两种基因的表达水平第59-61页
                    2.1.2.1 核酸mRNA的提取第59页
                    2.1.2.2 mRNA反转录为cDNA第59-60页
                    2.1.2.3 引物设计及合成第60-61页
            2.2 两种激素的添加第61-62页
                2.2.2 向分子试验所需要细胞中添加激素第62页
            2.3 间接免疫荧光第62-63页
                2.3.1 间接免疫荧光第62-63页
                2.3.2 荧光值分析第63页
            2.4 Real-timePCR第63-65页
                2.4.1 核酸mRNA的提取第63页
                2.4.2 mRNA反转录为cDNA第63页
                2.4.3 引物设计及合成第63-64页
                2.4.4 Real-timePCR检测第64-65页
            2.5 Westernblot第65-66页
                2.5.1 总蛋白提取第65页
                2.5.2 蛋白浓度测定第65页
                2.5.3 Western-blotting检测第65-66页
            2.6 免疫酶标法(ELISA)第66-67页
                2.6.1 细胞上清液收集第66-67页
        3 结果与分析第67-75页
            3.1 最佳诱导时间确定第67-69页
                3.1.1 MTT法通过细胞数量确定最佳诱导时间第67-68页
                3.1.2 Real-timePCR检测激素对两种因子诱导的最表达时间第68-69页
            3.2 免疫荧光第69-71页
            3.3 Real-timePCR第71-72页
            3.4 Westernblot第72-73页
            3.5 ELISA第73-75页
        4 讨论第75-76页
        5 小结第76-77页
    第四章 不同浓度的EGF和IGF-1对牦牛子宫内膜上皮细胞分泌黏蛋白和胎盘生长因子的影响第77-90页
        1 试验材料第77-78页
            1.1 细胞来源第77页
            1.2 主要仪器第77页
            1.3 主要试剂第77-78页
        2 试验方法第78-80页
            2.1 CCK8法测定抑制剂无毒性浓度范围第78页
            2.2 最佳诱导时间确定第78-79页
                2.2.1 MTT法检测细胞数量第78-79页
                2.2.2 Real-timePCR检测MUC1、PGF表达量第79页
            2.3 添加不同浓度的两种生长因子及其受体抑制剂第79-80页
                2.3.2 向分子试验所需要细胞中添加生长因子第80页
            2.4 免疫荧光检测两种生长因子对MUC1和PGF表达量的影响第80页
            2.5 Real-timePCR检测两种生长因子对MUC1和PGF表达量的影响.第80页
            2.6 Westernblotting检测两种生长因子对MUC1和PGF表达量的影响第80页
        3 结果第80-89页
            3.1 CCK8法测定受体抑制剂无毒性浓度范围第80-81页
            3.2 最佳诱导时间确定第81-83页
                3.2.1 MTT法检测细胞数量第81-82页
                3.2.2 Real-timePCR检测MUC1、PGF表达量第82-83页
            3.3 免疫荧光检测两种生长因子对MUC1和PGF表达量的影响第83-86页
            3.4 Real-timePCR检测两种生长因子对MUC1和PGF表达量的影响.第86-87页
            3.5 Westernblotting检测两种生长因子对MUC1和PGF表达量的影响第87-89页
        4 讨论第89-90页
        5 小结第90页
    结论第90-91页
参考文献第91-102页
致谢第102-103页
作者简介第103-104页
导师简介第104-106页

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