| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 缩略语/符号说明 | 第11-14页 |
| 前言 | 第14-19页 |
| 研究现状、成果 | 第14-18页 |
| 研究目的、方法 | 第18-19页 |
| 一、高抑制活性siRNA筛选、病毒包装及抑制效率检测 | 第19-39页 |
| 1.1 对象和方法 | 第19-34页 |
| 1.1.1 siRNA、shRNA设计及合成 | 第19-20页 |
| 1.1.2 质粒构建及慢病毒包装 | 第20-26页 |
| 1.1.3 大鼠大脑皮层神经元原代培养及慢病毒感染 | 第26-28页 |
| 1.1.4 脊髓损伤模型的构建及慢病毒局部注射 | 第28-30页 |
| 1.1.5 qRT-PCR及Western blot检测siRNA抑制效率 | 第30-34页 |
| 1.1.6 统计学方法 | 第34页 |
| 1.2 结果 | 第34-36页 |
| 1.2.1 大鼠大脑皮层神经元鉴定及纯度 | 第34页 |
| 1.2.2 慢病毒感染大脑皮层神经元效率 | 第34-35页 |
| 1.2.3 siRNA抑制效率初步筛选结果 | 第35页 |
| 1.2.4 体外慢病毒介导siRNA沉默PTPσ基因效率 | 第35页 |
| 1.2.5 体内慢病毒介导siRNA沉默PTPσ基因效率 | 第35-36页 |
| 1.3 讨论 | 第36-38页 |
| 1.4 小结 | 第38-39页 |
| 二、PTPσ-RNAi促进大鼠大脑皮层神经元轴突再生的体外试验研究 | 第39-44页 |
| 2.1 对象和方法 | 第39-40页 |
| 2.1.1 免疫细胞化学技术 | 第39页 |
| 2.1.2 CSPGs包被玻片的准备 | 第39-40页 |
| 2.1.3 神经元轴突长度及穿越CSPGs百分比的测定 | 第40页 |
| 2.1.4 统计学方法 | 第40页 |
| 2.2 结果 | 第40-41页 |
| 2.2.1 神经元轴突长度 | 第40-41页 |
| 2.2.2 神经元轴突穿越CSPGs的百分比 | 第41页 |
| 2.3 讨论 | 第41-43页 |
| 2.4 小结 | 第43-44页 |
| 三、PTPσ-RNAi促进大鼠脊髓损伤后轴突再生、突触形成及功能恢复的体内实验研究 | 第44-56页 |
| 3.1 对象和方法 | 第44-50页 |
| 3.1.1 免疫组织化学技术 | 第44-48页 |
| 3.1.2 BBB评分 | 第48-49页 |
| 3.1.3 脚印分析 | 第49-50页 |
| 3.1.4 体感诱发电位 | 第50页 |
| 3.1.5 统计学方法 | 第50页 |
| 3.2 结果 | 第50-53页 |
| 3.2.1 轴突再生、突触形成及胶质瘢痕形成 | 第50-51页 |
| 3.2.2 动物学观察 | 第51页 |
| 3.2.3 BBB评分结果 | 第51-52页 |
| 3.2.4 脚印分析结果 | 第52页 |
| 3.2.5 体感诱发电位结果 | 第52-53页 |
| 3.3 讨论 | 第53-55页 |
| 3.4 小结 | 第55-56页 |
| 全文结论 | 第56-57页 |
| 论文创新点 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-68页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第68-70页 |
| 附录 | 第70-79页 |
| 综述 硫酸软骨素蛋白多糖与神经系统的可塑性 | 第79-112页 |
| 参考文献 | 第93-112页 |
| 致谢 | 第112页 |
