| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 中英文缩略词表 | 第11-12页 |
| 第1章 引言 | 第12-15页 |
| 第2章 实验材料与方法 | 第15-24页 |
| 2.1 材料 | 第15-17页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第15页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第15-16页 |
| 2.1.3 主要仪器 | 第16页 |
| 2.1.4 主要的试剂配制 | 第16-17页 |
| 2.2 方法 | 第17-24页 |
| 2.2.1 免疫组织化学法体内定位小鼠卵巢生殖细胞标志物 MVH 和 Notch信号分子表达 | 第17-18页 |
| 2.2.2 Real-time PCR 检测小鼠卵巢生殖细胞标志物和 Notch 信号分子表达 | 第18-20页 |
| 2.2.3 免疫荧光双标记组织化学法 | 第20-21页 |
| 2.2.4 小鼠卵巢生殖干细胞的饲养层制备 | 第21-22页 |
| 2.2.5 小鼠卵巢生殖干细胞的体外分离 | 第22-23页 |
| 2.2.6 细胞双标记免疫荧光法 | 第23页 |
| 2.2.7 统计学分析 | 第23-24页 |
| 第3章 结果 | 第24-38页 |
| 3.1 免疫组化方法检测生殖细胞标志物和 Notch 信号分子在小鼠卵巢上皮组织中的表达及动态变化 | 第24-26页 |
| 3.1.1 免疫组化方法检测生殖细胞标志物 MVH 在小鼠卵巢上皮组织中的表达及动态变化 | 第24-25页 |
| 3.1.2 免疫组化方法检测 Notch 信号分子在小鼠卵巢上皮组织中的表达及动态变化 | 第25-26页 |
| 3.2 Real-time PCR 检测生殖细胞标志物在小鼠卵巢组织中的表达及动态变化 | 第26-27页 |
| 3.2.1 Real-time PCR 检测 MVH，Oct-4 在小鼠卵巢组织中的表达及动态变化 | 第26-27页 |
| 3.3 Real-timePCR 检测 Notch 信号分子在小鼠卵巢组织中的表达及动态变化 | 第27-30页 |
| 3.3.1 Real-time PCR 检测 Notch1 在小鼠卵巢组织中的表达及动态变化 | 第27-28页 |
| 3.3.2 Real-time PCR 检测 Hes1 在小鼠卵巢组织中的表达及动态变化 | 第28-29页 |
| 3.3.3 Real-time PCR 检测 Hes1 在小鼠卵巢组织中的表达及动态变化 | 第29-30页 |
| 3.4 免疫荧光双标记检测卵巢生殖细胞标志物 MVH 和 Notch 信号分子在小鼠卵巢上皮组织共表达 | 第30-35页 |
| 3.4.1 免疫荧光双标记检测卵巢生殖细胞标志物 MVH 和 Notch1 在小鼠卵巢上皮组织共表达 | 第30-32页 |
| 3.4.2 免疫荧光双标记检测卵巢生殖细胞标志物 MVH 和 Jagged1 在小鼠卵巢上皮组织共表达 | 第32-33页 |
| 3.4.3 免疫荧光双标记检测卵巢生殖细胞标志物 MVH 和 Hes1 在小鼠卵巢上皮组织共表达 | 第33-35页 |
| 3.5 卵巢生殖干细胞的体外培养与鉴定 | 第35-37页 |
| 3.5.1 卵巢生殖干细胞的体外培养 | 第35-36页 |
| 3.5.2 卵巢生殖干细胞标志基因的检测 | 第36-37页 |
| 3.6 细胞双标记免疫荧光检测卵巢生殖干细胞和 Notch 信号分子的共表达 | 第37-38页 |
| 第4章 讨论 | 第38-42页 |
| 4.1 小鼠卵巢组织上皮生殖细胞和 Notch 信号分子的表达及变化 | 第38-39页 |
| 4.2 原代卵巢生殖干细胞的分离培养 | 第39-40页 |
| 4.3 原代卵巢生殖干细胞的鉴定 | 第40页 |
| 4.4 双标记免疫荧光检测卵巢生殖细胞标志物和 Notch 信号分子的共表达的生殖细胞 | 第40-42页 |
| 第5章 结论与展望 | 第42-43页 |
| 5.1 结论 | 第42页 |
| 5.2 展望 | 第42-43页 |
| 致谢 | 第43-44页 |
| 参考文献 | 第44-47页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第47-48页 |
| 综述 | 第48-55页 |
| 参考文献 | 第54-55页 |
