| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 1 引言 | 第10-19页 |
| 1.1 几丁质的研究概述 | 第10-11页 |
| 1.2 壳聚糖的研究概述 | 第11-14页 |
| 1.2.1 壳聚糖的功能与应用 | 第11-13页 |
| 1.2.2 壳聚糖的制备方法 | 第13-14页 |
| 1.3 几丁质脱乙酰酶(CDA) | 第14-15页 |
| 1.3.1 CDA的来源及研究现状 | 第14页 |
| 1.3.2 CDA酶活测定方法 | 第14-15页 |
| 1.4 高产CDA菌株的选育 | 第15-17页 |
| 1.4.1 基因工程方法 | 第15-16页 |
| 1.4.2 化学诱变方法 | 第16页 |
| 1.4.3 物理诱变方法 | 第16-17页 |
| 1.5 本课题研究内容、目的及意义和创新点 | 第17-19页 |
| 1.5.1 本文研究的主要内容 | 第17-18页 |
| 1.5.2 本文研究的目的及意义 | 第18页 |
| 1.5.3 本文研究的创新点 | 第18-19页 |
| 2 材料与方法 | 第19-29页 |
| 2.1 实验材料与仪器 | 第19-21页 |
| 2.1.1 实验材料 | 第19页 |
| 2.1.2 实验试剂 | 第19-21页 |
| 2.1.3 仪器与设备 | 第21页 |
| 2.2 实验方法 | 第21-27页 |
| 2.2.1 菌种鉴定 | 第21-22页 |
| 2.2.2 CDA酶活的测定 | 第22-24页 |
| 2.2.3 紫外诱变育种 | 第24-25页 |
| 2.2.4 细胞壁几丁质脱乙酰度的测定方法 | 第25页 |
| 2.2.5 培养基配方及培养条件的优化 | 第25-26页 |
| 2.2.6 CDA粗酶学性质的研究 | 第26-27页 |
| 2.3 数据统计与分析方法 | 第27-29页 |
| 3 结果与分析 | 第29-51页 |
| 3.1 高产CDA突变菌株的选育 | 第29-36页 |
| 3.1.1 菌种鉴定 | 第29-31页 |
| 3.1.3 第二次紫外诱变 | 第31-33页 |
| 3.1.4 突变菌株UV-3S与原始菌株的发酵特性 | 第33-34页 |
| 3.1.5 细胞壁几丁质的脱乙酰度(DD) | 第34-36页 |
| 3.2 培养基组成对真菌生长与CDA合成的影响 | 第36-42页 |
| 3.2.1 碳源种类对CDA合成的影响 | 第36页 |
| 3.2.2 碳源的添加量对CDA合成的影响 | 第36-37页 |
| 3.2.3 氮源种类对CDA合成的影响 | 第37-38页 |
| 3.2.4 氮源的添加量对CDA合成的影响 | 第38-39页 |
| 3.2.5 金属离子种类对CDA合成的影响 | 第39页 |
| 3.2.6 NaH_2PO_4的添加量对CDA合成的影响 | 第39-40页 |
| 3.2.7 CaCl_2的添加量对CDA合成的影响 | 第40页 |
| 3.2.8 胶体几丁质的添加量对CDA合成的影响 | 第40-41页 |
| 3.2.9 正交结果与分析 | 第41-42页 |
| 3.3 培养条件对生物量与CDA合成的影响 | 第42-47页 |
| 3.3.1 渗透压对CDA合成的影响 | 第42-43页 |
| 3.3.2 pH对CDA合成的影响 | 第43-44页 |
| 3.3.3 发酵温度对CDA合成的影响 | 第44页 |
| 3.3.4 转速对CDA合成的影响 | 第44-45页 |
| 3.3.5 装液量对CDA合成的影响 | 第45-46页 |
| 3.3.6 接种量对CDA合成的影响 | 第46-47页 |
| 3.3.7 产酶优化后的发酵进程 | 第47页 |
| 3.4 CDA粗酶酶学性质的初步探究 | 第47-51页 |
| 3.4.1 CDA酶最适反应温度 | 第47-48页 |
| 3.4.2 CDA的热稳定性 | 第48页 |
| 3.4.3 CDA最适反应pH | 第48-49页 |
| 3.4.4 CDA酸碱稳定性 | 第49页 |
| 3.4.5 金属离子对CDA酶的影响 | 第49-51页 |
| 4 问题与讨论 | 第51-52页 |
| 4.1 诱变育种的原理 | 第51页 |
| 4.2 菌株产CDA发酵条件优化 | 第51页 |
| 4.3 CDA粗酶酶学性质 | 第51-52页 |
| 5 结论 | 第52-53页 |
| 6 展望 | 第53-54页 |
| 在校期间发表的学术论文 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-61页 |
| 致谢 | 第61页 |
